Преглед на съставките на флоротанините във Fucales, част 4
Jul 03, 2023
6. Заключителни бележки
Обобщавайки, Fucales се състои от огромна група видове морски водорасли със значителна променливост по отношение на съединенията на флоротанина. Спектрофотометричните анализи могат да бъдат полезен инструмент за високопроизводителен, лесен и рентабилен скрининг на съдържанието на флоротанин. Въпреки това, за разделяне, количествено определяне и характеризиране на тези съединения са от съществено значение стабилните аналитични техники. Понастоящем MS, съчетан с HPLC, предлага задоволителен подход за разделяне и характеризиране на олигомерни флоротанини. Бяха направени и значителни подобрения с разработването на по-специализирано оборудване, като UHPLC и HRMS. Въпреки това, когато са необходими пълни подробности за позициите на свързване и изомерните форми, само NMR може да предложи този капацитет.
Гликозидът на цистанхе може също така да повиши активността на SOD в сърдечните и чернодробните тъкани и значително да намали съдържанието на липофусцин и MDA във всяка тъкан, като ефективно улавя различни реактивни кислородни радикали (OH-, H₂O₂ и др.) и предпазва от увреждане на ДНК, причинено от ОН-радикали. Cistanche phenylethanoid гликозидите имат силна способност за изчистване на свободните радикали, по-висока редуцираща способност от витамин С, подобряват активността на SOD в сперматозоидната суспензия, намаляват съдържанието на MDA и имат известен защитен ефект върху функцията на мембраната на спермата. Полизахаридите Cistanche могат да повишат активността на SOD и GSH-Px в еритроцитите и белодробните тъкани на експериментално стареещи мишки, причинени от D-галактоза, както и да намалят съдържанието на MDA и колаген в белите дробове и плазмата и да увеличат съдържанието на еластин, имат добър очистващ ефект върху DPPH, удължава времето на хипоксия при стареещи мишки, подобрява активността на SOD в серума и забавя физиологичната дегенерация на белия дроб при експериментално стареещи мишки. С клетъчна морфологична дегенерация експериментите показват, че Cistanche има добра антиоксидантна способност и има потенциала да бъде лекарство за предотвратяване и лечение на заболявания, свързани със стареенето на кожата. В същото време, ехинакозидът в Cistanche има значителна способност да пречиства DPPH свободните радикали и има способността да пречиства реактивните кислородни видове и да предотвратява индуцираното от свободните радикали разграждане на колагена, а също така има добър възстановителен ефект върху увреждането на анионите от свободните радикали на тимина.
Въпреки това, това оборудване не е най-достъпното за лабораториите. Наличието на повече стандартни съединения може да допринесе за по-доброто използване на HPLC, тъй като ще генерира надеждни библиотеки за сравнение. Като алтернатива, изследването и идентифицирането на обикновените PT съединения чрез NMR спектроскопия, свързването им с HPLC времена на задържане и UV-спектрални данни може да представлява още една стъпка напред за изследователската общност.
Авторски принос:Концептуализация—MDC и SMC; литературен преглед и написване на оригиналния проект—MDC, SMGP, SS, FC, SSB, DCGAP, AMSS, SMC Всички автори са допринесли за написването—преглед и редактиране. Всички автори са прочели и са съгласни с публикуваната версия на ръкописа.
Финансиране: Тази работа получи финансова подкрепа от националните фондове на PT (FCT/MCTES, Fundação para a Ciência e Tecnologia и Ministério da Ciência, Tecnologia e Ensino Superior) чрез проектите UIDB/50006/2020 и UIDP/50006/2020. Благодарение на PTDC/BAA-AGR/31015/2017, „Алгафлор — флоротанини от кафяви водорасли: От бионаличност до разработването на нови функционални храни“, съфинансиран от Оперативна програма за конкурентоспособност и интернационализация — POCI, в рамките на Европейския фонд за регионално развитие (FEDER) и Фондацията за наука и технологии (FCT), чрез национални фондове. Силва С. благодари на FCT за финансирането чрез програма DL 57/2016–Norma transitória (Реф. SFRH/BPD/74299/2010).
Конфликти на интереси:Авторите декларират липса на конфликт на интереси.
Препратки
1. Чо, GY; Русо, Ф.; de Reviers, B.; Бу, SM; Reviers, BDE; Чо, GY; Русо, Ф.; Reviers, BDE Филогенетични връзки в рамките на Fucales (Phaeophyceae), оценени от фотосистема I, кодираща PsaA последователности. Phycologia 2006, 45, 512–519. [CrossRef]
2. Baweja, P.; Кумар, С.; Sahoo, D.; Левин, И. Биология на морските водорасли. В Морските водорасли в здравето и превенцията на заболяванията; Elsevier: Амстердам, Холандия, 2016 г.; стр. 41–106.
3. Бермехо, Р.; Chefaoui, RM; Engelen, AH; Буономо, Р.; Neiva, J.; Ferreira-Costa, J.; Пиърсън, Джорджия; Марба, Н.; Дуарте, CM; Airoldi, L.; et al. Морските гори на средиземноморско-атлантическия комплекс Cystoseira tamariscifolia показват южноиберийска генетична гореща точка и липса на репродуктивна изолация в Parapatry. Sci. Rep. 2018, 8, 10427. [CrossRef] [PubMed]
4. Монтеро, Л.; Ереро, М.; Ибанес, Е.; Иба, И.; Ибанес, И.; Cifuentes, A. Разделяне и характеризиране на флоротанини от кафяви водорасли Cystoseira abies-marina чрез цялостна двуизмерна течна хроматография. Електрофореза 2014, 35, 1644–1651. [CrossRef] [PubMed]
5. Jégou, C.; Конан, С.; Bihannic, I.; Серантола, С.; Guérard, F.; Stiger-Pouvreau, V. Съдържание на флоротанин и пигменти в местни видове Sargassaceae, образуващи корона, живеещи в интертидални скални басейни в Бретан (Франция): някаква връзка с тяхното вертикално разпределение и фенология? Mar. Drugs 2021, 19, 504. [CrossRef]
6. Guiry, MD; Guiry, GM; Sargassum, C. Agardh, 1820—AlgaeBase. Световна електронна публикация, Национален университет на Ирландия, Голуей.
7. Амадор-Кастро, Ф.; Гарсия-Каюела, Т.; Alper, HS; Родригес-Мартинес, В.; Carrillo-Nieves, D. Валоризация на биомасата от пелагичен саргас в устойчиви приложения: текущи тенденции и предизвикателства. J. Environ. Управляващ 2021, 283, 112013. [CrossRef]
8. Даниел, SL; Кирил, Б.; Леонел, П. Производство на био-тор от Ascophyllum nodosum и Sargassum muticum (Phaeophyceae). J. Oceanol. Лимнол. 2019, 37, 918–927. [CrossRef]
9. Гафар Шахриари, А.; Mohkami, A.; Ниази, А.; Hamed Ghodoum Parizipour, M.; Habibi-Pirkoohi, M. Приложение на екстракт от кафяви водорасли (Sargassum angustifolium) за подобряване на толерантността към суша в Canola (Brassica napus L.). Иран. J. Biotechnol. 2021, 19, e2775. [CrossRef]
10. Оливейра, JV; Alves, MM; Costa, JC Оптимизиране на производството на биогаз от Sargassum Sp. Използване на дизайн на експерименти за оценка на съвместното смилане с глицерол и отпадъчно олио за пържене. Биоресурс. техн. 2015, 175, 480–485. [CrossRef]
11. Джована Лопресто, C.; Палета, Р.; Филипели, П.; Galluccio, L.; de la Rosa, C.; Амаро, Е.; Jáuregui-Haza, U.; Atilio de Frias, J. Sargassum Invasion в Карибите: Възможност за крайбрежните общности да произвеждат биоенергия на базата на биорафинерия — преглед. Валоризация на отпадъчна биомаса 2022, 13, 2769–2793. [CrossRef]
12. Луис Годинес-Ортега, Х.; Куатлан-Кортес, JV; López-Bautista, JM; van Tussenbroek, BI Естествена история на плаващите видове Sargassum (Sargasso) от Мексико. По естествена история и екология на Мексико и Централна Америка; IntechOpen: Лондон, Обединеното кралство, 2021 г.
13. Солеймани, С.; Юсефзади, М.; Нежад, SBM; Пожарицкая, ON; Shikov, AN Оценка на фракции, извлечени от Polycladia Myrica: биологични активности, UVR защитен ефект и стабилност на състава на крем, базиран на него. J. Appl. Phycol. 2022, 34, 1763–1777. [CrossRef]
14. Serrão, EA; Алис, Луизиана; Brawley, SH Еволюция на Fucaceae (Phaeophyceae) Infrred от NrDNA-ITS. J. Physiol. 1999, 35, 382–394. [CrossRef]
15. Патара, РФ; Пайва, Л.; Neto, AI; Лима, Е.; Baptista, J. Хранителна стойност на избрани макроводорасли. J. Appl. Phycol. 2011, 23, 205–208. [CrossRef]
16. Лопес, Г.; Барбоза, М.; Валехо, Ф.; Gil-Izquierdo, Á.; Andrade, PB; Valentão, P.; Перейра, DM; Ferreres, F. Профилиране на флоротанини от Fucus spp. на северното португалско крайбрежие: химичен подход чрез HPLC-DAD-ESI/MSn и UPLC-ESI-QTOF/MS. Algal Res. 2018, 29, 113–120. [CrossRef]
17. Стансбъри, Дж.; Saunders, P.; Winston, D. Насърчаване на здравословна функция на щитовидната жлеза с йод, пикочен мехур, гугул и ирис. Дж. Рестор. Med. 2013, 1, 83–90. [CrossRef]
18. Guiry, MD; Guiry, GM Fucus Linnaeus, 1753—AlgaeBase. Световна електронна публикация, Национален университет на Ирландия, Голуей.
19. Расул, Ф.; Гупта, С.; Олас, JJ; Гечев, Т.; Sujeeth, N.; Mueller-Roeber, B. Грундиране с екстракт от морски водорасли силно подобрява устойчивостта на суша в Arabidopsis. Вътр. J. Mol. Sci. 2021, 22, 1469. [CrossRef] [PubMed]
20. Шукла, П.С.; Mantin, EG; Адил, М.; Байпай, С.; Critchley, AT; Prithiviraj, B. Биостимуланти на базата на Ascophyllum nodosum: Устойчиви приложения в селското стопанство за стимулиране на растежа на растенията, устойчивост на стрес и управление на заболявания. Отпред. Plant Sci. 2019, 10, 655. [CrossRef] [PubMed]
21. Водухе, М.; Marois, J.; Guay, V.; Leblanc, N.; Weisnagel, SJ; Bilodeau, J.-F.; Jacques, H. Маргинално въздействие на екстракт от кафяви морски водорасли Ascophyllum nodosum и Fucus vesiculosus върху метаболитния и възпалителния отговор при пациенти с наднормено тегло и затлъстяване в преддиабет. Mar. Drugs 2022, 20, 174. [CrossRef] [PubMed]
22. Фрейзър, CI; Вел, М.; Нелсън, Вашингтон; Macaya, EC; Хей, CH; Mccarthy, C.; Веласкес, М.; Нелсън, Вашингтон; Macaya, EC; Hay, CH Биогеографското значение на плаваемостта в макроводораслите: Казус от рода Durvillaea (Phaeophyceae) на южните водорасли, включително описания на два нови вида. J. Physiol. 2007, 56, 23–36. [CrossRef]
23. Capon, RJ; Barrow, RA; Rochfort, S.; Jobliig, M.; Skene, C.; Лейси, Е.; Гил, JH; Фридел, Т.; Wadsworth, D.; Джоблинг, М.; et al. Морски нематоциди: тетрахидрофурани от южноавстралийско кафяво водорасло, Notheia Anomaliz. Tetrahedron 1998, 54, 2227–2242. [CrossRef]
24. Мюлер, Р.; Райт, JT; Bolch, CJSS Историческа демография и пътища на колонизация на широко разпространените интертидални морски водорасли Hormosira banksii (Phaeophyceae) в Югоизточна Австралия. J. Physiol. 2018, 54, 56–65. [CrossRef]
25. Clayton, MN Окръжност и филогенетични връзки на южното полукълбо семейство Seirococcaceae (Phaeophyceae). Бот. март 1994 г., 37, 213–220. [CrossRef]
26. Кумар, LRG; Пол, PT; Анас, К.К.; Tejpal, CS; Чатърджи, NS; Анупама, TK; Матю, С.; Равишанкар, CN Флоротанини – биоактивност и перспективи за екстракция. J. Appl. Phycol. 2022, 34, 2173–2185. [CrossRef] [PubMed]
27. Хермунд, DB; Torsteinsen, H.; Вега, J.; Фигероа, Флорида; Jacobsen, C. Скрининг за нови козмецевтични продукти от кафяви водорасли Fucus vesiculosus с антиоксидантни и фотозащитни свойства. Морски лекарства 2022, 20, 687. [CrossRef]
28. Слънцезащитен крем със син филтър Lashika SPF 45 PA плюс плюс плюс с кафяви морски водорасли—30 мл.
29. Hello Sunny Essence Sun Stick Glow SPF50 плюс Pa плюс плюс плюс плюс.
30. Койвико, Р.; Loponen, J.; Хонканен, Т.; Jormalainen, V. Съдържание на разтворими, свързани с клетъчната стена и ексудирани флоротанини в кафявото водорасло Fucus vesiculosus, с отражение върху техните екологични функции. J. Chem. Ecol. 2005, 31, 195–212. [CrossRef]
31. Мачу, Л.; Мисуркова, Л.; Вавра Амброзова, Й.; Орсавова, Й.; Млчек, Дж.; Sochor, J.; Юрикова, Т. Фенолно съдържание и антиоксидантен капацитет в хранителни продукти от водорасли. Молекули 2015, 20, 1118–1133. [CrossRef]
32. Сабина Фарвин, KH; Jacobsen, C. Фенолни съединения и антиоксидантни активности на избрани видове морски водорасли от датското крайбрежие. Food Chem. 2013, 138, 1670–1681. [CrossRef] [PubMed]
33. Ким, SM; Канг, ЮЗ; Jeon, J.-S.; Jung, Y.-J.; Kim, W.-R.; Ким, CY; Хм, Б.-Х. Определяне на основните флоротанини в Eisenia велосипеди с помощта на хидрофилна хроматография на взаимодействие: сезонни вариации и характеристики на екстракция. Food Chem. 2013, 138, 2399–2406. [CrossRef]
34. Конан, С.; Goulard, F.; Stiger, V.; Deslandes, E.; Gall, EA Междувидови и времеви вариации в нивата на флоротанин в съвкупност от кафяви водорасли. Бот. март 2004 г., 47, 410–416. [CrossRef]
35. Лопес, Г.; Sousa, C.; Силва, LR; Пинто, Е.; Andrade, PB; Бернардо, Дж.; Муга, Т.; Valentão, P. Могат ли пречистените екстракти от флоротанини да представляват нова фармакологична алтернатива за микробни инфекции със свързани възпалителни състояния? PLoS ONE 2012, 7, e31145. [CrossRef]
36. Oblucinskaya, ED; Пожарицкая, ON; Захаров, ДВ; Флисюк, Е.В.; Тернинко, II; Генералова, Ю.Е.; Смехова, И.Е.; Shikov, AN Биохимичният състав и антиоксидантните свойства на Fucus vesiculosus от Арктическия регион. Mar. Drugs 2022, 20, 193. [CrossRef]
37. Pedersen, A. Проучвания върху съдържанието на фенол и усвояването на тежки метали във фукоидите. В единадесетия международен симпозиум по морски водорасли. Развитие на хидробиологията; Bird, CJ, Ragan, MA, Eds.; Springer: Дордрехт, Холандия, 1984 г.; Том 22, стр. 498–504.
38. Конан, С.; Stengel, DB Въздействие на солеността на околната среда и медта върху кафявите водорасли: 2. Интерактивни ефекти върху фенолния пул и оценка на способността за свързване на метали на флоротанина. Aquat. Токсикол. 2011, 104, 1–13. [CrossRef] [PubMed]
39. Камия, М.; Нишио, Т.; Йокояма, А.; Яцуя, К.; Нишигаки, Т.; Йошикава, С.; Ohki, K. Сезонни вариации на флоротанина в видовете Sargassacean от крайбрежието на Японско море. Phycol. Рез. 2010, 58, 53–61. [CrossRef]
40. Ragan, MA; Jensen, A. Количествени изследвания върху феноли от кафяви водорасли. II. Сезонни вариации в съдържанието на полифеноли в Ascophyllum Nodosum (L.) Le Jol. и Fucus vesiculosus (L.). J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1978, 34, 245–258. [CrossRef]
41. Павия, Х.; Toth, GB Влияние на светлината и азота върху съдържанието на флоротанин в кафявите морски водорасли Ascophyllum nodosum и Fucus vesiculosus. Hydrobiologia 2000, 440, 299–305. [CrossRef]
42. Павия, Х.; Brock, E. Външни фактори, влияещи върху производството на флоротанин в кафявото водорасло Ascophyllum nodosum. Mar. Ecol. Прог. сер. 2000, 193, 285–294. [CrossRef]
43. Тала, Ф.; Веласкес, М.; Мансила, А.; Macaya, EC; Thiel, M. Географска ширина и сезонни ефекти върху краткосрочната аклиматизация на плаващи видове водорасли от югоизточния Тихи океан. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 2016, 483, 31–41. [CrossRef]
44. Сардари, RRRR; Prothmann, J.; Gregersen, O.; Turner, C.; Karlsson, EN Идентифициране на флоротанини в кафяви водорасли, Saccharina Latissima и Ascophyllum nodosum чрез течна хроматография с ултра-висока ефективност, свързана с тандемна масспектрометрия с висока разделителна способност. Молекули 2021, 26, 43. [CrossRef]
45. Tierney, MS; Soler-Vila, A.; Рай, Дания; Крофт, Аляска; Brunton, NP; Smyth, TJ UPLC-MS Профилиране на флоротанинови полимери с ниско молекулно тегло в Ascophyllum nodosum, Pelvetia canaliculata и Fucus spiralis. Метаболомика 2014, 10, 524–535. [CrossRef]
46. Catarino, MD; Силва, AAMS; Круз, Монтана; Матеус, Н.; Силва, AAMS; Cardoso, SM Флоротанини от Fucus vesiculosus: Модулиране на възпалителния отговор чрез блокиране на NF-KB сигнален път. Вътр. J. Mol. Sci. 2020, 21, 6897. [CrossRef]
47. Феререс, Ф.; Lopes, G.; Gil-Izquierdo, A.; Andrade, PB; Sousa, C.; Муга, Т.; Valentão, P. Флоротанинови екстракти от Fucales, характеризирани с HPLC-DAD-ESI-MSn: Подходи към инхибиторния капацитет на хиалуронидазата и антиоксидантни свойства. Март наркотици 2012, 10, 2766–2781. [CrossRef]
48. Catarino, MD; Силва, AMS; Матеус, Н.; Cardoso, SM Оптимизиране на екстракцията на флоротанини от Fucus vesiculosus и оценка на техния потенциал за предотвратяване на метаболитни нарушения. Mar. Drugs 2019, 17, 162. [CrossRef] [PubMed]
49. Ли, Й.; Фу, X.; Дуан, Д.; Лиу, X.; Xu, JJJ; Gao, X. Екстракция и идентификация на флоротанини от кафявото водорасло, Sargassum fusiform (Harvey) Setchell. Mar. Drugs 2017, 15, 49. [CrossRef] [PubMed]
50. Уанг, Т.; Йонсдотир, Р.; Liu, H.; Gu, L.; Kristinsson, HG; Raghavan, S.; Ólafsdóttir, G. Антиоксидантни способности на флоротанини, извлечени от кафявите водорасли Fucus vesiculosus. J. Agric. Food Chem. 2012, 60, 5874–5883. [CrossRef] [PubMed]
51. Oblucinskaya, ED; Даурцева, А.В.; Пожарицкая, ON; Флисюк, Е.В.; Shikov, AN Естествени дълбоки евтектични разтворители като алтернативи за извличане на флоротанини от кафяви водорасли. Pharm. Chem. J. 2019, 53, 243–247. [CrossRef]
52. Кадъм, СУ; Тивари, БК; О'Донъл, CP; O'Donnell, CP Приложение на нови технологии за извличане на биоактивни вещества от морски водорасли. J. Agric. Food Chem. 2013, 61, 4667–4675. [CrossRef] [PubMed]
53. Михалак, И.; Chojnacka, K. Екстракти от водорасли: Технология и напредък. инж. Life Sci. 2014, 14, 581–591. [CrossRef]
54. Grosso, C.; Valentão, P.; Ferreres, F.; Andrade, PB; Mayer, AM Алтернативни и ефективни методи за екстракция на морски съединения. Март наркотици 2015, 13, 3182–3230. [CrossRef]
55. Менг, В.; Му, Т.; Sun, H.; Garcia-Vaquero, М. Флоротанини: Преглед на методите за екстракция, структурни характеристики, биоактивност, бионаличност и бъдещи тенденции. Algal Res. 2021, 60, 102484. [CrossRef]
56. Лопес, Г.; Барбоза, М.; Andrade, PB; Valentão, P. Флоротанини от Fucales: Потенциал за контрол на хипергликемия и свързани с диабета съдови усложнения. J. Appl. Phycol. 2019, 31, 3143–3152. [CrossRef]
57. Oblucinskaya, ED; Пожарицкая, ON; Захарова, Л.В.; Даурцева, А.В.; Флисюк, Е.В.; Shikov, AN Ефикасност на естествени дълбоки евтектични разтворители за екстракция на хидрофилни и липофилни съединения от Fucus vesiculosus. Молекули 2021, 26, 4198. [CrossRef]
58. Habeebullah, SFK; Alagarsamy, S.; Sattari, Z.; Ал-Хаддад, С.; Fakhraldeen, S.; Al-Ghunaim, A.; Al-Yamani, F. Ензимно-подпомогнато извличане на биоактивни съединения от кафяви морски водорасли и характеризиране. J. Appl. Phycol. 2020, 32, 615–629. [CrossRef]
59. Анк, Г.; Антонио Перес Да Гама, B.; Перейра, RC Вариация на ширината в съдържанието на флоротанин от кафяви морски водорасли в Югозападния Атлантически океан. PeerJ 2019, 7, e7379. [CrossRef] [PubMed]
60. Табасум, MR; Xia, A.; Murphy, JD Сезонни вариации на химичния състав и производството на биометан от кафявото водорасло Ascophyllum nodosum. Биоресурс. техн. 2016, 216, 219–226. [CrossRef]
61. Хермунд, DB; Heung, SY; Thomsen, BR; Akoh, CC; Jacobsen, C. Подобряване на окислителната стабилност на емулсиите за грижа за кожата с антиоксидантни екстракти от кафяви водорасли Fucus vesiculosus. J. Am. Oil Chem. Soc. 2018, 95, 1509–1520. [CrossRef]
62. Умат, В.; Тивари, БК; Джайсвал, Аляска; Кондън, К.; Гарсия-Вакеро, М.; О'Дохърти, Дж.; O'Donnell, C.; Rajauria, G. Оптимизиране на ултразвукова честота, време за екстракция и разтворител за възстановяване на полифеноли, флоротанини и свързаната антиоксидантна активност от кафяви морски водорасли. Mar. Drugs 2020, 18, 250. [CrossRef]
63. Sumampouw, Джорджия; Jacobsen, C.; Getachew, AT Оптимизиране на извличането на фенолни антиоксиданти от Fucus vesiculosus чрез течна екстракция под налягане. J. Appl. Phycol. 2021, 33, 1195–1207. [CrossRef]
64. Юан, Й.; Джан, Дж.; Фен, Дж.; Кларк, Дж.; Шен, П.; Li, Y.; Zhang, C. Микровълнова асистирана екстракция на фенолни съединения от четири икономически вида кафяви макроводорасли и оценка на техните антиоксидантни активности и инхибиторни ефекти върху -амилаза, -глюкозидаза, панкреатична липаза и тирозиназа. Food Res. Вътр. 2018, 113, 288–297. [CrossRef]
65. ˇCagalj, M.; Скроза, Д.; Tabanelli, G.; Özogul, F.; Šimat, V. Увеличаване на антиоксидантния капацитет на Padina pavonica чрез избор на правилните методи за сушене и екстракция. Процеси 2021, 9, 587. [CrossRef]
66. Амаранте, SJ; Catarino, MD; Marçal, C.; Силва, AMS; Ферейра, Р.; Cardoso, SM Микровълнова асистирана екстракция на флоротанини от Fucus vesiculosus. Mar. Drugs 2020, 18, 559. [CrossRef]
67. Bian, C.; Гао, J.; Ленг, X.; Sun, C.; Дай, Л.; Xu, Z. Течност за задържане на влага и метод за приготвяне на същата. Китайски патент CN103520065A, 22 януари 2014 г.
68. да Силва, JRM; Alves, CMM; Pinteus, SFG; Мартинс, AIM; Freitas, RPF; Pedrosa, RFP процес за получаване на обогатен с флоротанин екстракт с антиензимно действие за използване в дерматологията. Европейски патент EP3910064, 17 ноември 2021 г.
69. Prigent, A. Метод за получаване на екстракти от морски водорасли. Международен патент WO2015071477A1, 21 май 2015 г.
70. Stiger-Poivreau, V.; Конан, С.; Gager, L.; Coiffard, L.; Couteau, C.; Декостър, С.; Gombault, LN; Cotterei, C.; Mahe, A. Екстракти от кафяви водорасли, включително фенолни съединения и техните козметични приложения. Френски патент FR3095348A1, 30 октомври 2020 г.
71. Тае, HL; Лий, JM; Park, SY Процес за приготвяне на ензимно третирани екстракти от Hizikia fusiforme, притежаващи активност за подобряване на имунната система и функционален хранителен и фармацевтичен състав, включващ същото. Корейски патент KR20140032101A, 14 март 2014 г.
72. Лю, X.; Юан, В.; Sharma-shivappa, R.; Zanten, J. Van Антиоксидантна активност на флоротанини от кафяви водорасли. Вътр. J. Agric. Biol. инж. 2017, 10, 184–191. [CrossRef]
73. Абделхамид, А.; Jouini, М.; Бел Хадж Амор, Х.; Mzoughi, Z.; Дриди, М.; Бен Саид, Р.; Bouraoui, A. Фитохимичен анализ и оценка на антиоксидантния, противовъзпалителния и антиноцицептивния потенциал на богатите на флоротанин фракции от три средиземноморски кафяви морски водорасли. Мар Биотехнология. 2018, 20, 60–74. [CrossRef] [PubMed]
74. Lamuela-Raventós, RM Folin-Ciocalteu Метод за измерване на общо фенолно съдържание и антиоксидантен капацитет. При измерване на антиоксидантна активност и капацитет: последни тенденции и приложения; John Wiley & Sons, Ltd.: Hoboken, NJ, САЩ, 2017 г.; стр. 107–115. ISBN 9781119135388.
75. Котас, Й.; Леандро, А.; Монтейро, П.; Пачеко, Д.; Figueirinha, A.; Gonc ˛alves, AMM; да Силва, GJ; Pereira, L. Феноли от водорасли: от екстракция до приложения. Mar. Drugs 2020, 18, 384. [CrossRef] [PubMed]
76. Everette, JD; Bryant, QM; Грийн, AM; Аби, ЮА; Wangila, GW; Walker, RB Задълбочено изследване на реактивоспособността на различни класове съединения спрямо реагента Folin-Ciocalteu. J. Agric. Food Chem. 2010, 58, 8139–8144. [CrossRef] [PubMed]
77. Стърн, JL; Hagerman, AE; Steinberg, PD; Уинтър, ФК; Estes, JA Нов анализ за количествено определяне на флоротанини от кафяви водорасли и сравнения с предишни методи. J. Chem. Ecol. 1996, 22, 1273–1293. [CrossRef]
78. Steevensz, AJ; MacKinnon, SL; Hankinson, R.; Craft, C.; Конан, С.; Stengel, DB; Melanson, JE Профилиране на флоротанини в кафяви макроводорасли чрез течна хроматография-масова спектрометрия с висока разделителна способност. Phytochem. анален 2012, 23, 547–553. [CrossRef]
79. Агреган, Р.; Мунеката, ПЕС; Франко, Д.; Домингес, Р.; Carballo, J.; Lorenzo, JM Фенолни съединения от три вида кафяви морски водорасли с помощта на LC-DAD–ESI-MS/MS. Food Res. Вътр. 2017, 99, 979–985. [CrossRef]
80. Гломбица, KW; Schmidt, A. Trihydroxyphlorethols от кафявото водорасло Carpophyllum angustifolium. Фитохимия 1999, 51, 1095–1100. [CrossRef]
81. Sailler, B.; Glombitza, KW Флоретоли и Фукофлоретоли от кафявото водорасло Cystophora retroflexa. Фитохимия 1999, 50, 869–881. [CrossRef]
82. Гломбица, KW; Keusgen, М.; Hauperich, S. Fucophlorethols от кафявите водорасли Sargassum spinuligerum и Cystophora torulosa. Фитохимия 1997, 46, 1417–1422. [CrossRef]
83. Гломбица, KW; Keusgen, М. Фухалоли и дехидроксифухалоли от кафявото водорасло Sargassum spinuligerum. Фитохимия 1995, 38, 987–995. [CrossRef]
84. Гломбица, KW; Schmidt, A. Нехалогенирани и халогенирани флоротанини от кафявото водорасло Carpophyllum angustifolium. J. Nat. произв. 1999, 62, 1238–1240. [CrossRef]
85. Кох, М.; Gregson, RP Бромирани флоретоли и нехалогенирани флоротанини от кафявото водорасло Cystophora congested. Фитохимия 1984, 23, 2633–2637. [CrossRef]
86. Sailler, B.; Glombitza, KW Халогенирани флоретоли и фукофлоретоли от кафявото водорасло Cystophora retroflexa. Нац. Токсини 1999, 7, 57–62. [CrossRef]
87. Койвико, Р.; Loponen, J.; Pihlaja, K.; Jormalainen, V. Високоефективен течен хроматографски анализ на флоротанини от кафявото водорасло Fucus vesiculosus. Phytochem. анален 2007, 18, 326–332. [CrossRef] [PubMed]
88. Корона, Г.; Ji, Y.; Anegboonlap, P.; Hotchkiss, S.; Gill, C.; Yaqoob, P.; Спенсър, JPE; Rowland, I. Стомашно-чревни модификации и бионаличност на флоротанини от кафяви морски водорасли и ефекти върху възпалителни маркери. бр. J. Nutr. 2016, 115, 1240–1253. [CrossRef] [PubMed]
89. Сентковска, А.; Pyrzynska, K. HILIC Хроматография: Мощна техника при анализа на полифеноли. В Полифеноли в растенията; Academic Press: Cambridge, MA, USA, 2019; стр. 341–351. [CrossRef]
90. Маррубини, Г.; Appelblad, P.; Майета, М.; Papetti, A. Хроматография на хидрофилно взаимодействие при анализ на хранителни матрици: Актуализиран преглед. Food Chem. 2018, 257, 53–66. [CrossRef]
91. Пържинска, К.; Sentkowska, A. Последни разработки в HPLC разделянето на фенолни хранителни съединения. Крит. Rev. Anal. Chem. 2015, 45, 41–51. [CrossRef]
92. Монтеро, Л.; Sánchez-Camargo, AP; Гарсия-Каняс, В.; Tanniou, A.; Stiger-Pouvreau, V.; Русо, М.; Растрели, Л.; Cifuentes, A.; Ереро, М.; Ibáñez, E. Антипролиферативна активност и химическа характеристика чрез цялостна двуизмерна течна хроматография, свързана с масова спектрометрия на флоротанини от кафявото макроводорасло Sargassum muticum, събрано на северноатлантическите брегове. J. Chromatogr. 2016, 1428, 115–125. [CrossRef]
93. Swartz, M. HPLC детектори: кратък преглед. J. Liq. Chromatogr. отн. техн. 2010, 33, 1130–1150. [CrossRef]
94. Vissers, AM; Калигиани, А.; Сфорца, С.; Vincken, JP; Gruppen, H. Флоротанинов състав на Laminaria digitata. Phytochem. анален 2017, 28, 487–495. [CrossRef]
95. Olate-Gallegos, C.; Барига, А.; Вергара, С.; Fredes, C.; Гарсия, П.; Гименез, Б.; Robert, P. Идентифициране на полифеноли от екстракти от чилийски кафяви морски водорасли чрез LC-DAD-ESI-MS/MS. J. Aquat. Храна Прод. техн. 2019, 28, 375–391. [CrossRef]
96. Catarino, MD; Фернандес, И.; Оливейра, Х.; Караскал, М.; Ферейра, Р.; Силва, AMS; Круз, Монтана; Матеус, Н.; Cardoso, SM Антитуморна активност на флоротанини, получени от Fucus vesiculosus чрез активиране на апоптотични сигнали в клетъчни линии на стомашен и колоректален тумор. Вътр. J. Mol. Sci. 2021, 22, 7604. [CrossRef] [PubMed]
97. Audibert, L.; Фошон, М.; Blanc, N.; Hauchard, D.; Ар Гал, Е.; Gall, EA Фенолни съединения в кафявите морски водорасли Ascophyllum nodosum: Разпределение и дейности за отстраняване на радикали. Phytochem. анален 2010, 21, 399–405. [CrossRef]
98. Хефернан, Н.; Brunton, NP; Фицджералд, RJ; Smyth, TJ Профилиране на молекулното тегло и изобилието на структурни изомери на флоротанини, получени от макроводорасли. Mar. Drugs 2015, 13, 509–528. [CrossRef]
99. Kirke, DA; Смит, Ти Джей; Рай, Дания; Кени, О.; Stengel, DB Химическата и антиоксидантна стабилност на изолирани флоротанини с ниско молекулно тегло. Food Chem. 2017, 221, 1104–1112. [CrossRef] [PubMed]
100. Джан, Р.; Юен, AKL; Магнусон, М.; Райт, JT; de Nys, R.; Магистри, АФ; Maschmeyer, T. Сравнителна оценка на активността и структурата на флоротанините от кафявите морски водорасли Carpophyllum flexuosum. Algal Res. 2018, 29, 130–141. [CrossRef]
101. Allwood, JW; Evans, H.; Austin, C.; McDougall, GJ Извличане, обогатяване и LC-MSn-базирано характеризиране на флоротанини и свързани феноли от кафяви морски водорасли, Ascophyllum nodosum. Mar. Drugs 2020, 18, 448. [CrossRef]
102. Койвико, Р.; Eränen, JK; Loponen, J.; Jormalainen, V. Вариации на флоротанини сред три популации на Fucus vesiculosus, разкрити чрез HPLC и колориметрично количествено определяне. J. Chem. Ecol. 2008, 34, 57–64. [CrossRef]
103. Kirke, DA; Рай, Дания; Смит, Ти Джей; Stengel, DB Оценка на временната вариация в профилите на флоротанин с ниско молекулно тегло в четири интертидални кафяви макроводорасли. Algal Res. 2019, 41, 101550. [CrossRef]
104. Парис, С.; Kehraus, S.; Крик, А.; Гломбица, KW; Кармели, С.; Климо, К.; Gerhäuser, C.; König, GM In Vitro хемопревантивен потенциал на Fucophlorethols от кафявото водорасло Fucus vesiculosus L. чрез антиоксидантна активност и инхибиране на избрани ензими на цитохром P450. Фитохимия 2010, 71, 221–229. [CrossRef]
105. Хермунд, DB; Плаза, М.; Turner, C.; Йонсдотир, Р.; Kristinsson, HG; Jacobsen, C.; Nielsen, KF Структурно зависим антиоксидантен капацитет на флоротанини от исландски Fucus vesiculosus чрез UHPLC-DAD-ECD-QTOFMS. Food Chem. 2018, 240, 904–909. [CrossRef] [PubMed]
106. Овчинников, ДВ; Bogolitsyn, KG; Дружинина, А.С.; Каплицин, PA; Паршина, AE; Пиковской, II; Хорошев, О.Ю.; Турова, PN; Ставрианиди, AN; Shpigun, OA Изследване на полифенолни компоненти в екстракти от арктически кафяви водорасли от тип Fucus vesiculosus чрез течна хроматография и мас-спектрометрия. J. Anal. Chem. 2020 г., 75, 633–639. [CrossRef]
107. Келог, Дж.; Грейс, MH; Lila, MA Флоротанини от водорасли от Аляска инхибират карболитичната ензимна активност. Mar. Drugs 2014, 12, 5277–5294. [CrossRef] [PubMed]
108. Келог, Дж.; Еспозито, Д.; Грейс, MH; Комарницки, С.; Lila, MA Водораслите от Аляска намаляват възпалението в макрофагите RAW 264.7 и намаляват натрупването на липиди в 3T3-L1 адипоцитите. J. Функц. Храни 2015, 15, 396–407. [CrossRef]
109. Болдрик, Франция; McFadden, K.; Ибърс, М.; Sung, C.; Мофат, Т.; Мегари, К.; Томас, К.; Мичъл, П.; Wallace, JMW; Pourshahidi, LK; et al. Въздействие на богат на (поли)фенол екстракт от кафявото водорасло Ascophyllum nodosum върху увреждането на ДНК и антиоксидантната активност при популация с наднормено тегло или затлъстяване: рандомизирано контролирано проучване. Am. J. Clin. Nutr. 2018, 108, 688–700. [CrossRef]
110. Васкес-Родригес, Б.; Гутиерес-Урибе, JA; Antunes-Ricardo, M.; Santos-Zea, L.; Cruz-Suárez, LE Извличане с помощта на ултразвук на флоротанини и полизахариди от Silvetia compressa (Phaeophyceae). J. Appl. Phycol. 2020, 32, 1441–1453. [CrossRef]
111. Keusgen, М.; Glombitza, KW Флоретоли, фухалоли и техните производни от кафявото водорасло Sargassum spinuligerum. Фитохимия 1995, 38, 975–985. [CrossRef]
112. Keusgen, M.; Glombitza, KW Псевдофухалоли от кафявото водорасло Sargassum spinuligerum. Фитохимия 1997, 46, 1403–1415. [CrossRef]
113. Виджаян, Р.; Читра, Л.; Пенислушиян, С.; Palvannan, T. Изследване на биоактивна фракция на Sargassum wightii: In vitro изясняване на инхибирането на ангиотензин-i-конвертиращия ензим и антиоксидантния потенциал. Вътр. J. Food Prop. 2018, 21, 674–684. [CrossRef]
114. Корд, А.; Foudil-Cherif, Y.; Амиали, М.; Boumechhour, A.; Benfares, R. Състав на флоротанини, капацитет за отстраняване на радикали и редуцираща сила на феноли от кафявото водорасло Cystoseira sauvageauana. J. Aquat. Храна Прод. техн. 2021, 30, 426–438. [CrossRef]
115. Геда, С.; Naby, MA; Мохамед, Т.; Перейра, Л.; Khamis, A. Антидиабетна и антиоксидантна активност на флоротанини, извлечени от кафяви морски водорасли Cystoseira compressa при индуцирани от стрептозотоцин диабетни плъхове. Environ. Sci. замърсяване. Рез. 2021, 28, 22886–22901. [CrossRef] [PubMed]
116. Трифан, А.; Vasincu, A.; Лука, SV; Neophytou, C.; Волфрам, Е.; Opitz, SEW; Сава, Д.; Букур, Л.; Cioroiu, BI; Мирон, А.; et al. Разкриване на потенциала на морските водорасли от черноморското крайбрежие на Румъния като източници на биоактивни съединения. Част I: Cystoseira barbata (Stackhouse) C. Agardh. Food Chem. Токсикол. 2019, 134, 110820. [CrossRef] [PubMed]
117. Gonçalves-Fernández, C.; Sineiro, J.; Морейра, Р.; Gualillo, O. Екстракция и характеризиране на обогатени с флоротанин фракции от атлантическо водорасло Bifurcaria bifurcata и оценка на тяхната цитотоксична активност в миша клетъчна линия. J. Appl. Phycol. 2019, 31, 2573–2583. [CrossRef]
118. Catarino, MD; Alves-Silva, JM; Falcão, SI; Вилас-Боас, М.; Жордао, М.; Cardoso, SM Хроматография като инструмент за идентифициране на биоактивни съединения в пчелни продукти от ботанически произход. По химия, биология и потенциални приложения на пчелни растителни продукти; Cardoso, SM, Silva, AMS, Eds.; Bentham Science Publishers: Sharjah, Обединени арабски емирства, 2016 г.; стр. 89–149. ISBN 9781681082370.
119. Форд, Л.; Теодориду, К.; Шелдрейк, GN; Walsh, PJ Критичен преглед на аналитични методи, използвани за химическо характеризиране и количествено определяне на флоротанинови съединения в кафяви морски водорасли. Phytochem. анален 2019, 30, 587–599. [CrossRef] [PubMed]
120. Исаза Мартинес, JH; Torres Castañeda, HG Приготвяне и хроматографски анализ на флоротанини. J. Chromatogr. Sci. 2013, 51, 825–838. [CrossRef]
121. Rajauria, G. Оптимизиране и валидиране на обратнофазов HPLC метод за качествена и количествена оценка на полифеноли в морски водорасли. J. Pharm. Biomed. анален 2018, 148, 230–237. [CrossRef]
122. Кумар, Й.; Singhal, S.; Тарафдар, А.; Фаранде, А.; Ганесан, М.; Badgujar, PC Извличане с помощта на ултразвук на избрани ядливи макроводорасли: Ефект върху антиоксидантната активност и количествена оценка на полифенолите чрез течна хроматография с тандемна масспектрометрия (LC-MS/MS). Algal Res. 2020, 52, 102114. [CrossRef]
123. Катарино, DM; Силва, MA; Cardoso, MS Fucaceae: източник на биоактивни флоротанини. Вътр. J. Mol. Sci. 2017, 18, 1327. [CrossRef]
124. Пантидос, Н.; Boath, A.; Лунд, В.; Конър, С.; McDougall, GJ Богати на феноли екстракти от ядливи морски водорасли, Ascophyllum nodosum, инхибират -амилаза и -глюкозидаза: потенциални антихипергликемични ефекти. J. Функц. Храни 2014, 10, 201–209. [CrossRef]
125. Картик, Р.; Манигандан, В.; Шиба, Р.; Сараванан, Р.; Rajesh, PR Структурна характеристика и сравнителни биомедицински свойства на флороглюцинол от индийски кафяви морски водорасли. J. Appl. Phycol. 2016, 28, 3561–3573. [CrossRef]
126. Парис, С.; Kehraus, S.; Пит, Р.; Küpper, FC; Гломбица, К.-В.; König, GM Сезонни вариации на полифеноли в Ascophyllum nodosum (Phaeophyceae). Евро. J. Physiol. 2009, 44, 331–338. [CrossRef]
127. Шреста, С.; Джан, В.; Smid, SD Флоротанини: преглед на биосинтезата, химията и биоактивността. Food Biosci. 2021, 39, 100832. [CrossRef]
128. Ерпел, Ф.; Матеос, Р.; Pérez-Jiménez, J.; Pérez-Correa, JR Флоротанини: от изолиране и структурна характеристика до оценка на техния антидиабетичен и противораков потенциал. Food Res. Вътр. 2020, 137, 109589. [CrossRef] [PubMed]
129. Jégou, C.; Керварец, Н.; Серантола, С.; Bihannic, I.; Stiger-Pouvreau, V. Използване на NMR за количествено определяне на флоротанини: Случаят на Cystoseira tamariscifolia, произвеждащо флороглюцинол кафяво макроводорасло в Бретан (Франция). Talanta 2015, 135, 1–6. [CrossRef]
130. Jégou, C.; Кулиоли, Г.; Керварец, Н.; Саймън, Г.; Stiger-Pouvreau, V. LC/ESI-MSn и 1H HR-MAS ЯМР аналитични методи като полезни таксономични инструменти в рамките на род Cystoseira C. Agardh (Fucales; Phaeophyceae). Talanta 2010, 83, 613–622. [CrossRef]
131. Форд, Л.; Стратакос, AC; Теодориду, К.; Дик, JTA; Шелдрейк, GN; Линтън, М.; Corcionivoschi, N.; Walsh, PJ Полифеноли от кафяви морски водорасли като потенциален антимикробен агент в храните за животни. ACS Omega 2020, 5, 9093–9103. [CrossRef]
132. Гломбица, KW; Rosener, HU; Müller, D. Bifuhalol und Diphlorethol Aus Cystoseira tamariscifolia. Фитохимия 1975, 14, 1115–1116. [CrossRef]
133. Якобсен, С.; Sørensen, A.-DM; Holdt, SL; Akoh, CC; Hermund, DB Характеризиране и приложения на нови антиоксиданти от морски водорасли. Annu. Rev. Food Sci. техн. 2019, 10, 541–568. [CrossRef]
134. Матеос, Р.; Pérez-Correa, JR; Домингес, Х. Биоактивни свойства на морските феноли. Mar. Drugs 2020, 18, 501. [CrossRef]
135. Гломбица, KW; Hauperich, S.; Keusgen, М. Флоротанини от кафявите водорасли Cystophora torulosa и Sargassum spinuligerum. Нац. Токсини 1997, 5, 58–63. [CrossRef]
136. Кох, М.; Гломбица, KW; Rösener, HU Полихидроксифенилови етери от Bifurcaria bifurcata. Фитохимия 1981, 20, 1373–1379. [CrossRef]
137. Серантола, С.; Бретон, Ф.; Gall, EA; Deslandes, E. Съвместна поява и антиоксидантна активност на Fucol и Fucophlorethol класове на полимерни феноли във Fucus spiralis. Бот. март 2006 г., 49, 347–351. [CrossRef]
138. McInnes, AG; Ragan, MA; Smith, DG; Walter, JA Полифлороглюциноли с високо молекулно тегло на морско кафяво водорасло Fucus vesiculosus L. 1H и 13C спектроскопия с ядрено-магнитен резонанс. Мога. J. Chem. 1985, 63, 304–313. [CrossRef]
139. льо Лан, К.; Surget, G.; Couteau, C.; Coiffard, L.; Серантола, С.; Gaillard, F.; Larnicol, М.; Зубиа, М.; Guérard, F.; Poupart, N.; et al. Слънцезащитен, антиоксидантен и бактерициден капацитет на флоротанини от кафявото макроводорасло Halidrys siliquosa. J. Appl. Phycol. 2016, 28, 3547–3559. [CrossRef]
