Авторски принос:SB и YEK замислиха и проектираха структурата и съдържанието на прегледа. SB анализира данните и написа ръкописа. EEM, MS, HB, NM, LK и YEK допринесоха за писането — преглед и редактиране. YEK ръководи проекта. Всички автори са прочели и са съгласни с публикуваната версия на ръкописа.

Гликозидът на цистанхе може също така да повиши активността на SOD в сърдечните и чернодробните тъкани и значително да намали съдържанието на липофусцин и MDA във всяка тъкан, като ефективно улавя различни реактивни кислородни радикали (OH-, H₂O₂ и др.) и предпазва от увреждане на ДНК, причинено от ОН-радикали. Cistanche phenylethanoid гликозидите имат силна способност за изчистване на свободните радикали, по-висока редуцираща способност от витамин С, подобряват активността на SOD в сперматозоидната суспензия, намаляват съдържанието на MDA и имат известен защитен ефект върху функцията на мембраната на спермата. Полизахаридите Cistanche могат да повишат активността на SOD и GSH-Px в еритроцитите и белодробните тъкани на експериментално стареещи мишки, причинени от D-галактоза, както и да намалят съдържанието на MDA и колаген в белите дробове и плазмата и да увеличат съдържанието на еластин, имат добър очистващ ефект върху DPPH, удължава времето на хипоксия при стареещи мишки, подобрява активността на SOD в серума и забавя физиологичната дегенерация на белия дроб при експериментално стареещи мишки. С клетъчна морфологична дегенерация експериментите показват, че Cistanche има добра антиоксидантна способност и има потенциала да бъде лекарство за предотвратяване и лечение на заболявания, свързани със стареенето на кожата. В същото време, ехинакозидът в Cistanche има значителна способност да улавя свободните радикали DPPH и има способността да улавя реактивни кислородни видове и да предотвратява индуцираното от свободните радикали разграждане на колаген, а също така има добър възстановителен ефект върху увреждането на аниона от свободните радикали на тимина.

Щракнете върху Cistanche Tablets Предимства

【За повече информация:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

Финансиране:Това изследване е финансирано от фондация OCP Phosboucraâ, Laâyoune, Мароко, грант № PR008.

Изявление на институционалния съвет за преглед:Не е приложимо.

Декларация за информирано съгласие:Не е приложимо.

Декларация за наличност на данни:Споделянето на данни не се отнася за тази статия, тъй като по време на настоящото проучване не са генерирани или анализирани набори от данни.

Конфликти на интереси:Авторите декларират, че изследването е проведено при липса на търговски или финансови взаимоотношения, които биха могли да се тълкуват като потенциален конфликт на интереси.

Препратки

1. Технология на растителни клетки—вашият партньор в културите на растителни тъкани. Приложение на технологията на растителните клетки в козметичната индустрия. Налични онлайн:

2. Изследване на приоритетите. Размерът на пазара на растителни екстракти ще достигне около 22,49 милиарда щатски долара до 2030 г.

3. Изследване на приоритетите. Размер на пазара на растителни екстракти на стойност около 22,49 милиарда щатски долара до 2030 г.

4. Трехан, С.; Michniak-Kohn, B.; Бери, К. Растителни стволови клетки в козметиката: настоящи тенденции и бъдещи насоки. Бъдещи Sci. OA 2017, 3, FSO226. [CrossRef] [PubMed]

5. Георгиев, В.; Славов, А.; Василева, И.; Павлов, А. Растителната клетъчна култура като нововъзникваща технология за производство на активни козметични съставки. инж. Life Sci. 2018, 18, 779–798. [CrossRef] [PubMed]

6. Еспиноса-Леал, Калифорния; Пуенте-Гарза, Калифорния; García-Lara, S. In Vitro растителна тъканна култура: средства за производство на биологично активни съединения. Планта 2018, 248, 1–18. [CrossRef] [PubMed]

7. Намдео, AG; Ingawale, DK Ashwagandha: Напредък в растителните биотехнологични подходи за размножаване и производство на биоактивни съединения. J. Ethnopharmacol. 2021, 271, 113709. [CrossRef]

8. Парадо, К.; Mercado-Saenz, S.; Perez-Davo, A.; Gilaberte, Y.; Gonzalez, S.; Juarranz, A. Екологични стресови фактори върху стареенето на кожата. Механистични прозрения. Преден. Pharmacol. 2019, 10, 759. [CrossRef]

9. Перес-S0. Юсеф, Х.; Алхадж, М.; Sharma, S. Анатомия, кожа (интегумент), епидермис; StatPearls Publishing: Treasure Island, Флорида, САЩ, 2017 г.

11. Шин, J.-W.; Kwon, S.-H.; Choi, J.-Y.; Na, J.-I.; Ха, C.-H.; Choi, H.-R.; Парк, K.-C. Молекулярни механизми на стареене на кожата и подходи против стареене. Вътр. J. Mol. Sci. 2019, 20, 2126. [CrossRef]

12. Михалак, М.; Пиерзак, М.; Kr˛ecisz, B.; Suliga, E. Биоактивни съединения за здравето на кожата: Преглед. Хранителни вещества 2021, 13, 203. [CrossRef]

13. Кобаяши, Т.; Рикардо-Гонзалес, RR; Moro, K. Вродени лимфоидни клетки, живеещи в кожата – вродени пазители и регулатори на кожата. Тенденции Immunol. 2020 г., 41, 100–112. [CrossRef]

14. Nielsen, MM; Арял, Е.; Сафари, Е.; Мойсоска, Б.; Jenssen, H.; Prabhala, BK Текущо състояние на SLC и ABC транспортери в кожата и тяхната връзка с потните метаболити и кожни заболявания. Протеоми 2021, 9, 23. [CrossRef]

15. Wang, AS; Dreesen, O. Биомаркери на клетъчното стареене и стареенето на кожата. Преден. Женет. 2018, 9, 247. [CrossRef] [PubMed]

16. Бонте, Ф.; Girard, D.; Archambault, J.-C.; Desmoulière, A. Промени в кожата по време на стареене. По биохимия и клетъчна биология на стареенето: Част II Клинични науки; Springer: Берлин/Хайделберг, Германия, 2019 г.; Том 91, стр. 249–280.

17. Ринерталер, М.; Bischof, J.; Streubel, MK; Трост, А.; Richter, K. Оксидативен стрес при стареене на човешката кожа. Биомолекули 2015, 5, 545–589. [CrossRef] [PubMed]

18. Замарон, А.; Lorrio, S.; González, S.; Хуаранц, А. Fernblock предотвратява увреждането на дермалните клетки, причинено от видимо и инфрачервено лъчение. Вътр. J. Mol. Sci. 2018, 19, 2250. [CrossRef]

19. Каммайер, А.; Luiten, R. Оксидационни събития и стареене на кожата. Стареене Res. Rev. 2015, 21, 16–29. [CrossRef] [PubMed]

20. Кристенсен, Л.; Suggs, A.; Барон, Е. Ултравиолетова фотобиология в дерматологията. В ултравиолетовата светлина в човешкото здраве, болести и околна среда; Springer: Берлин/Хайделберг, Германия, 2017 г.; Том 996, стр. 89–104.

21. Самтия, М.; Алуко, RE; Dhewa, Т.; Moreno-Rojas, JM Потенциални ползи за здравето от биоактивни компоненти, получени от растителна храна: Общ преглед. Храни 2021, 10, 839. [CrossRef]

22. Бакрим, WB; Нуркахянти, ADR; Dmirieh, М.; Махди, И.; Elgamal, AM; Ел Рей, Масачузетс; Уинк, М.; Sobeh, M. Фитохимично профилиране на екстракт от листа на Ximenia Americana Var. Caffra и нейните антиоксидантни, антибактериални и антистареещи дейности In Vitro и в Caenorhabditis Elegans: Козмецевтичен и дерматологичен подход. Оксид. Med. клетка. Лонгев. 2022, 2022, 3486257. [CrossRef]

23. Джао, Й.; Wu, Y.; Wang, M. Биоактивни вещества от растителен произход 30. Handb. Food Chem. 2015, 967, 967–1008.

24. Abeyrathne, EDNS; Нам, К.; Хуанг, X.; Ahn, DU Структура, ефикасност, механизми и приложения на антиоксиданти на растителна и животинска основа: преглед. Антиоксиданти 2022, 11, 1025. [CrossRef]

25. Сметанска, И. Устойчиво производство на полифеноли и антиоксиданти от растителни in vitro култури. В биообработката на растителни ин витро системи; Springer: Берлин/Хайделберг, Германия, 2018 г.; стр. 225–269.

26. Namdeo, A. Извличане на растителни клетки за производство на вторични метаболити: преглед. Pharmacogn Rev. 2007, 1, 69–79.

27. Георгиев, М.И.; Weber, J.; Maciuk, A. Биообработка на растителни клетъчни култури за масово производство на целеви съединения. Приложение Microbiol. Биотехнология. 2009, 83, 809–823. [CrossRef]

28. Wang, SY; Chen, C.-T.; Sciarappa, W.; Уанг, CY; Camp, MJ качество на плодовете, антиоксидантен капацитет и флавоноидно съдържание на органично и конвенционално отглеждани боровинки. J. Agric. Food Chem. 2008, 56, 5788–5794. [CrossRef] [PubMed]

29. Roberts, SC Производство и инженерство на терпеноиди в растителни клетъчни култури. Нац. Chem. Biol. 2007, 3, 387–395. [CrossRef] [PubMed]

30. Кояго-Крус, Е.; Корел, М.; Стинко, CM; Хернанц, Д.; Мориана, А.; Meléndez-Martínez, AJ Ефект на регулирано дефицитно напояване върху параметрите на качеството, каротеноидите и фенолните вещества на различни сортове домати (Solanum Lycopersicum L.). Food Res. Вътр. 2017, 96, 72–83. [CrossRef] [PubMed]

31. Алкесар, Б.; Родриго, MJ; Ладо, Дж.; Zacarías, L. Сравнително физиологично и транскрипционно изследване на каротеноидната биосинтеза в бял и червен грейпфрут (Citrus Paradisi Macf.). Дърво Генет. Геноми 2013, 9, 1257–1269. [CrossRef]

32. Khoo, KS; Лий, SY; Ooi, CW; Фу, X.; Мяо, X.; Ling, TC; Show, PL Последни постижения в биорафинирането на астаксантин от Haematococcus Pluvialis. Биоресурс. техн. 2019, 288, 121606. [CrossRef]

33. Игрея, WS; Мая, FdA; Lopes, AS; Chisté, RC Биотехнологичното производство на каротеноиди с използване на евтини субстрати се влияе от параметрите на култивиране: преглед. Вътр. J. Mol. Sci. 2021, 22, 8819. [CrossRef] [PubMed]

34. Кидо, С.; Deffieux, D.; Douat-Casassus, C.; Pouységu, L. Растителни полифеноли: химични свойства, биологични активности и синтез. Анджю. Chem. Вътр. Изд. 2011, 50, 586–621. [CrossRef]

35. Брага, А.; Ферейра, П.; Оливейра, Дж.; Роша, И.; Faria, N. Хетерологично производство на ресвератрол в бактериални гостоприемници: текущо състояние и перспективи. World J. Microbiol. Биотехнология. 2018, 34, 1–11. [CrossRef]

36. Beekwilder, J.; Wolswinkel, R.; Jonker, H.; Хол, Р.; де Вос, CR; Bovy, A. Производство на ресвератрол в рекомбинантни микроорганизми. Приложение Environ. Microbiol. 2006, 72, 5670–5672. [CrossRef]

37. Ли, М.; Шнайдер, К.; Кристенсен, М.; Бородина, И.; Nielsen, J. Инженерна мая за високо ниво на производство на стилбеноидни антиоксиданти. Sci. Rep. 2016, 6, 1–8. [CrossRef]

38. Гаспар, П.; Дудник, А.; Neves, AR; Föster, J. Engineering Lactococcus Lactis за производство на Stilbene. В сборника на 28-та международна конференция за полифеноли 2016 г., Виена, Австрия, 11 юли 2016 г.; DTU Дания: Kongens Lyngby, Дания, 2016 г.

39. Kallscheuer, N.; Фогт, М.; Стенцел, А.; Gätgens, J.; Бот, М.; Marienhagen, J. Конструиране на платформен щам Corynebacterium Glutamicum за производството на стилбени и (2S)-флаванони. Metab. инж. 2016, 38, 47–55. [CrossRef] [PubMed]

40. Тиен, Б.; Liu, J. Resveratrol: Преглед на растителни източници, синтез, стабилност, модификация и приложение в храните. J. Sci. Храна Agric. 2020, 100, 1392–1404. [CrossRef] [PubMed]

41. Янг, Й.; Лин, Й.; Li, L.; Линхард, RJ; Yan, Y. Регулиране на метаболизма на Malonyl-CoA чрез синтетични антисенс РНК за подобрена биосинтеза на природни продукти. Metab. инж. 2015, 29, 217–226. [CrossRef]

42. Мирас-Морено, Б.; Педреньо, M.Á.; Romero, LA Биоактивност и бионаличност на фитоен и стратегии за подобряване на неговото производство. Phytochem. Rev. 2019, 18, 359–376. [CrossRef]

43. Рамирес-Естрада, К.; Vidal-Limon, H.; Идалго, Д.; Мояно, Е.; Golenioswki, М.; Cusidó, RM; Palazon, J. Elicitation, ефективна стратегия за биотехнологично производство на биоактивни съединения с висока добавена стойност във фабрики за растителни клетки. Molecules 2016, 21, 182. [CrossRef]

44. Експозито, О.; Бонфил, М.; Мояно, Е.; Онрубия, М.; Мирджалили, М.; Cusido, R.; Palazon, J. Биотехнологично производство на таксол и сродни таксоиди: текущо състояние и перспективи. Противоракови агенти Med. Chem. Бивш. Curr. Med. Chem.-Anti-Cancer агенти 2009, 9, 109–121. [CrossRef]

45. Мацубара, К.; Китани, С.; Йошиока, Т.; Моримото, Т.; Fujita, Y.; Yamada, Y. Културата с висока плътност на клетките на Coptis Japonica увеличава производството на берберин. J. Chem. техн. Биотехнология. 1989, 46, 61–69. [CrossRef]

46. ​​Chattopadhyay, S.; Шривастава, AK; Bhojwani, SS; Bisaria, VS Производство на подофилотоксин от растителни клетъчни култури на Podophyllum Hexandrum в биореактор. J. Biosci. Bioeng. 2002, 93, 215–220. [CrossRef]

47. Гао, Х.; Xu, J.; Лиу, X.; Лиу, Б.; Deng, X. Светлинен ефект върху производството на каротеноиди и експресията на гени за каротеногенеза в цитрусов калус от четири генотипа. Acta Physiol. растение. 2011, 33, 2485–2492. [CrossRef]

48. Буранасуджа, В.; Рани, Д.; Малла, А.; Кобтракул, К.; Vimolmangkang, S. Прозрения за антиоксидантните дейности и потенциала против стареене на кожата на екстракт от калус от Centella Asiatica (L.). Sci. Rep. 2021, 11, 1–16. [CrossRef]

49. Kikowska, MA; Chmielewska, M.; Włodarczyk, A.; Studzi´nska-Sroka, E.; ˙Zuchowski, J.; Stochmal, A.; Kotwicka, М.; Thiem, B. Ефект на пентациклични тритерпеноиди-богат на калус екстракт от Chaenomeles Japonica (Thunb.) Lindl. Ex Spach относно жизнеспособността, морфологията и пролиферацията на нормални фибробласти на човешка кожа. Молекули 2018, 23, 3009. [CrossRef] [PubMed]

50. Hseu, Y.-C.; Кориви, М.; Lin, F.-Y.; Li, M.-L.; Lin, R.-W.; Wu, J.-J.; Янг, Х.-Л. Транс-канелената киселина отслабва UVA-индуцираното фотостареене чрез инхибиране на AP-1 активиране и индуциране на Nrf2-медиирани антиоксидантни гени във фибробластите на човешката кожа. J. Dermatol. Sci. 2018, 90, 123–134. [CrossRef] [PubMed]

51. Адхикари, Д.; Панти, ВК; Pangeni, R.; Ким, HJ; Park, JW Подготовка, характеризиране и биологични активности на локални съставки против стареене в екстракт от Citrus Junos Callus. Molecules 2017, 22, 2198. [CrossRef] [PubMed]

52. Хонг, Й.; Лий, Х.; Tran, Q.; Bayarmunkh, C.; Boldbaatar, D.; Kwon, SH; Парк, Дж.; Park, J. Благоприятни ефекти на Diplectria Barbata (Wall. Ex CB Clarke) Franken et Roos Extract върху стареенето и антиоксидантите in Vitro и in Vivo. Токсикол. Рез. 2021, 37, 71–83. [CrossRef]

53. Менбари, А.; Бахрамнеджад, Б.; Абузарипур, М.; Шахмансури, Е.; Zarei, MA Създаване на калусни и клетъчни суспензионни култури от плодове на ябълка Granny Smith и антитирозиназна активност на техните екстракти. Sci. Хортик. 2021, 286, 110222. [CrossRef]

54. Machała, P.; Людвицка, О.; Kicel, A.; Джеджич, А.; Olszewska, MA; ˙Zbikowska, HM Валоризиране на фотозащитния потенциал на фитохимично стандартизирания екстракт от листа на маслина (Olea Europaea L.) във фибробласти на човешка кожа, облъчени с UVA. Молекули 2022, 27, 5144. [CrossRef]

55. Лий, Х.; Hong, Y.; Tran, Q.; Чо, Х.; Ким, М.; Ким, С.; Kwon, SH; Парк, С.; Парк, Дж.; Park, J. Нова роля за Ginsenoside RG3 в антистареенето чрез митохондриална функция в ултравиолетово облъчени човешки дермални фибробласти. J. Ginseng Res. 2019, 43, 431–441. [CrossRef]

56. Лий, Х.; Hong, Y.; Kwon, SH; Парк, Дж.; Park, J. Ефекти против стареене на Piper Cambodianum P. Fourn. Екстракт от нормални човешки дермални фибробластни клетки и модел на заздравяване на рани при мишки. Clin. Интерв. Стареене 2016, 11, 1017.

57. Рани, Д.; Буранасуджа, В.; Кобтракул, К.; De-Eknamkul, W.; Vimolmangkang, S. Извличане на Pueraria Candollei Var. Суспензионните клетки Mirifica обещават антиоксидантен потенциал, предполагащ активност против стареене. Култ на органна тъкан от растителна клетка. PCTOC 2021, 145, 29–41. [CrossRef]

58. Ким, HJ; Park, JW Анти-стареещи дейности на Pyrus Pyrifolia Var Culta Plant Callus Extract. Троп. J. Pharm. Рез. 2017, 16, 1579–1588. [CrossRef]

59. Ким, Х.-Р.; Ким, С.; Jie, EY; Ким, SJ; Ahn, WS; Jeong, S.-I.; Ю, К.-Й.; Ким, SW; Ким, С.-Й. Ефекти на екстракт от Tiarella Polyphylla D. Don Callus върху фотостареенето в човешките фибробласти на препуциума Hs68 клетки. Нац. произв. Общ. 2021, 16, 1934578X211016970. [CrossRef]

60. Чалагери, Г.; Dhananjaya, S.; Рагавендра, П.; Кумар, LS; Babu, U.; Varma, SR Заместване на растителни части на растения с екстракти от клетки на калус: казус с Woodfordia Fruticosa Kurz.–Мощна съставка във формули за грижа за кожата. S. Afr. J. Bot. 2019, 123, 351–360. [CrossRef]

61. Джао, П.; Алам, MB; Лий, С.-Х. Защита на UVB-индуцираното фотостареене чрез воден екстракт от Fuzhuan-Brick Tea чрез MAPKs/Nrf2- медиирано регулиране надолу на MMP-1. Хранителни вещества 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

62. Hseu, Y.-C.; Tsai, Y.-C.; Huang, P.-J.; Оу, Т.-Т.; Кориви, М.; Hsu, L.-S.; Chang, S.-H.; Wu, C.-R.; Янг, Х.-Л. Дерматозащитните ефекти на Lucidone от Lindera Erythrocarpa чрез индукция на Nrf2-медиирани антиоксидантни гени в UVA-облъчени кератиноцити на човешка кожа. J. Функц. Храни 2015, 12, 303–318. [CrossRef]

63. Чо, WK; Ким, Х.-И.; Kim, S.-Y.; Seo, HH; Песен, J.; Ким, Дж.; Шин, ДС; Джо, Й.; Чой, Х.; Lee, JH Ефекти против стареене на екстракт от култура на калус от Leontopodium Alpinum (Edelweiss) чрез профилиране на транскриптоми. Гени 2020, 11, 230. [CrossRef]

64. Вичит, В.; Saewan, N. Антиоксидантни и анти-стареещи дейности на калусната култура от три сорта ориз. Козметика 2022, 9, 79. [CrossRef]

65. Кунчана, К.; Jarisarapurin, W.; Chularojmontri, L.; Wattanapitayakul, SK Потенциално използване на екстракт от плодове Amla (Phyllanthus Emblica L.) за защита на кожните кератиноцити от възпаление и апоптоза след UVB облъчване. Антиоксиданти 2021, 10, 703. [CrossRef]

66. Farràs, A.; Митянс, М.; Маги, Ф.; Каприоли, Г.; Vinardell, MP; López, V. Polypodium Vulgare L. (Polypodiaceae) като източник на биоактивни съединения: полифенолен профил, цитотоксичност и цитопротективни свойства в различни клетъчни линии. Преден. Pharmacol. 2021, 12, 727528. [CrossRef]

67. Парк, Делавер; Адхикари, Д.; Pangeni, R.; Панти, ВК; Ким, HJ; Park, JW Подготовка и характеризиране на екстракт от калус от Pyrus Pyrifolia и изследване на ефектите му върху регенерацията на кожата. Козметика 2018, 5, 71. [CrossRef]

68. Sobeh, М.; Петрук, Г.; Осман, С.; Ел Рей, Масачузетс; Imbimbo, P.; Монти, DM; Wink, M. Изолиране на мирицитрин и 3,5-ди-О-метил госипетин от Syzygium Samarangense и оценка на тяхното участие в защитата на кератиноцитите срещу оксидативен стрес чрез активиране на Nrf-2 пътя. Молекули 2019, 24, 1839. [CrossRef]

69. Захид, НА; Джаафар, HZ; Hakiman, M. Микроразмножаване на джинджифил (Zingiber Officinale Roscoe) "Bentong" и оценка на неговите вторични метаболити и антиоксидантни активности в сравнение с конвенционално размножаваното растение. Растения 2021, 10, 630. [CrossRef] [PubMed]

70. Джин, С.; Hyun, TK Извънматочна експресия на производството на антоцианинов пигмент 1 (PAP1) подобрява антиоксидантните и антимеланогенните свойства на женшен (Panax Ginseng CA Meyer) космати корени. Антиоксиданти 2020, 9, 922. [CrossRef] [PubMed]

71. Сена, LM; Zappelli, C.; Apone, F.; Барбулова, А.; Тито, А.; Леоне, А.; Оливиеро, Т.; Ferracane, R.; Fogliano, V.; Colucci, G. Brassica Rapa Hairy Root Extracts насърчават депигментацията на кожата чрез модулиране на производството и разпределението на меланин. J. Cosmet. Dermatol. 2018, 17, 246–257. [CrossRef] [PubMed]

72. Петрук, Г.; Илиано, А.; Del Giudice, R.; Raiola, A.; Amoresano, A.; Ригано, MM; Piccoli, R.; Monti, DM Малвидин и производни на цианидин от Açai Fruit (Euterpe Oleracea Mart.) Противодействат на UV-A-индуцирания оксидативен стрес в обезсмъртени фибробласти. J. Photochem. Photobiol. B 2017, 172, 42–51. [CrossRef] [PubMed]

73. Апоне, Ф.; Тито, А.; Карола, А.; Arciello, S.; Тортора, А.; Филипини, Л.; Моноли, И.; Cucchiara, М.; Гибертони, С.; Chrispeels, MJ Смес от пептиди и захари, получени от растителни клетъчни стени, повишава защитните реакции на растенията към стреса и намалява свързаните със стареенето молекулярни промени в култивираните кожни клетки. J. Biotechnol. 2010, 145, 367–376. [CrossRef]

74. Сън, З.; Парк, SY; Hwang, E.; Джан, М.; Seo, SA; Лин, П.; Yi, T. Thymus Vulgaris облекчава увреждането на кожата, предизвикано от UVB облъчване чрез инхибиране на MAPK/AP-1 и активиране на Nrf2-ARE антиоксидантна система. J. Cell. Mol. Med. 2017, 21, 336–348. [CrossRef]

75. Тито, А.; Карола, А.; Бимонте, М.; Барбулова, А.; Arciello, S.; де Лаурентис, Ф.; Моноли, И.; Хил, Дж.; Гибертони, С.; Colucci, G. Екстракт от стволови клетки от домати, съдържащ антиоксидантни съединения и хелатиращи метали фактори, предпазва клетките на кожата от увреждания, предизвикани от тежки метали. Вътр. J. Cosmet. Sci. 2011, 33, 543–552. [CrossRef]

76. Jiao, J.; Gai, Q.-Y.; Уанг, X.; Qin, Q.-P.; Wang, Z.-Y.; Liu, J.; Fu, Y.-J. Извличане на хитозан от Isatis Tinctoria L. космати коренови култури за подобряване на флавоноидната продуктивност и генната експресия и свързаната антиоксидантна активност. Производство на промишлени култури 2018, 124, 28–35. [CrossRef]

77. Исах, Т.; Умар, С.; Mujib, A.; Шарма, депутат; Rajasekharan, P.; Зафар, Н.; Frukh, A. Вторичен метаболизъм на фармацевтични продукти в растенията in vitro култури: Стратегии, подходи и ограничения за постигане на по-висок добив. Култ на органна тъкан от растителна клетка. PCTOC 2018, 132, 239–265. [CrossRef]

78. Лий, К.-Дж.; Парк, Y.; Ким, J.-Y.; Jeong, T.-K.; Юн, К.-С.; Paek, K.-Y.; Парк, S.-Y. Производство на биомаса и биоактивни съединения от случайни коренови култури на Polygonum multiflorum с помощта на въздушни биореактори. J. Plant Biotechnol. 2015, 42, 34–42. [CrossRef]

79. Шарма, П.; Padh, H.; Shrivastava, N. Космати коренови култури: подходяща биологична система за изучаване на вторични метаболитни пътища в растенията. инж. Life Sci. 2013, 13, 62–75. [CrossRef]

80. Гжегорчик, И.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. Създаване на Salvia Officinalis L. космати коренови култури за производство на розмаринова киселина. Z. Für Naturforschung C 2006, 61, 351–356. [CrossRef]

81. Weremczuk-Je ˙zyna, I.; Гжегорчик-Каролак, И.; Фридрих, Б.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. Космати корени на Dracocephalum Moldavica: съдържание на розмаринова киселина и антиоксидантен потенциал. Acta Physiol. растение. 2013, 35, 2095–2103. [CrossRef]

82. Сривастава, С.; Conlan, XA; Adholeya, A.; Cahill, DM Елитни космати корени на Ocimum Basilicum като нов източник на розмаринова киселина и антиоксиданти. Култ на органна тъкан от растителна клетка. PCTOC 2016, 126, 19–32. [CrossRef]

83. Шекарчи, М.; Hajimehdipoor, H.; Saeidnia, S.; Гохари, AR; Hamedani, MP Сравнително изследване на съдържанието на розмаринова киселина в някои растения от семейство Labiatae. Pharmacogn. Маг. 2012, 8, 37.

84. Апоне, Ф.; Тито, А.; Arciello, S.; Carotenuto, G.; Colucci, MG Растителни тъканни култури като източници на съставки за приложения за грижа за кожата. Annu. Plant Rev. Онлайн 2018, 3, 135–150.

85. Оно, NN; Tian, ​​L. Множеството култури с космати корени: плодовити възможности. Plant Sci. 2011, 180, 439–446. [CrossRef] [PubMed]

86. Джин, С.; Банг, С.; Ан, М.-А.; Лий, К.; Ким, К.; Hyun, TK Свръхпроизводството на антоцианин в косматите корени на женшен подобрява техните антиоксидантни, антимикробни и антиеластазни дейности. J. Plant Biotechnol. 2021, 48, 100–105. [CrossRef]

87. Bouzroud, S.; El Maaiden, E.; Sobeh, М.; Девкота, К.П.; Boukcim, H.; Куисни, Л.; El Kharrassi, Y. Микроразмножаване на Opuntia и други видове кактуси чрез пролиферация на аксиларни издънки: цялостен преглед. Преден. Plant Sci. 2022, 13, 926653. [CrossRef] [PubMed]

88. Гонсалвес, С.; Romano, A. In Vitro култура на лавандули (Lavandula spp.) И производството на вторични метаболити. Биотехнология. адв. 2013, 31, 166–174. [CrossRef]

89. Goyali, J.; Игамбердиев, А.; Debnath, S. Микроразмножаването засяга не само морфологията на плодовете на боровинката Lowbush (Vaccinium Angustifolium Ait.), но също така и нейните лечебни свойства. В сборника с доклади от Международния симпозиум за лечебни растения и природни продукти, Монреал, Квебек, Канада, 17–19 юни 2013 г.; стр. 137–142.

90. Даках, А.; Зейд, С.; Сюлейман, М.; Абас, С.; Wink, M. In vitro размножаване на лечебното растение Ziziphora Tenuior L. и оценка на неговата антиоксидантна активност. Saudi J. Biol. Sci. 2014, 21, 317–323. [CrossRef] [PubMed]

91. Sooriamuthu, S.; Варгезе, RJ; Bayyapureddy, A.; Джон, SST; Narayanan, R. Индуцирано от светлина производство на антидепресантни съединения в етиолирани култури от издънки на Hypericum Hookerianum Wight & Arn. (Hypericaceae). Култ на органна тъкан от растителна клетка. PCTOC 2013, 115, 169–178.

92. Гжегорчик, И.; Матковски, А.; Wysoki ´nska, H. Антиоксидантна активност на екстракти от in vitro култури на Salvia Officinalis L. Food Chem. 2007, 104, 536–541. [CrossRef]

93. Al Khateeb, W.; Хюсеин, Е.; Qouta, L.; Alu'datt, М.; Ал-Шара, Б.; Abu-Zaiton, A. Размножаване in vitro и характеризиране на фенолно съдържание заедно с антиоксидантни и антимикробни активности на Cichorium Pumilum Jacq. Култ на органна тъкан от растителна клетка. PCTOC 2012, 110, 103–110. [CrossRef]

94. Реман, Р.; Чаудхари, М.; Khawar, K.; Lu, G.; Mannan, A.; Zia, M. In vitro размножаване на Caralluma tuberculata и оценка на антиоксидантния потенциал. Biologia (Bratisl.) 2014, 69, 341–349. [CrossRef]

95. Абдулхафиз, Ф.; Мохамед, А.; Каят, Ф.; Закария, С.; Хамза, З.; Реди Памуру, Р.; Гундала, П.Б.; Reduan, MFH Микроразмножаване на Alocasia Longiloba Miq и сравнителни антиоксидантни свойства на етанолни екстракти от растение, отгледано на полето, размножено in vitro и калус, получен in vitro. Растения 2020, 9, 816. [CrossRef]

96. Икеучи, М.; Сугимото, К.; Iwase, A. Растителен калус: Механизми на индукция и репресия. Растителна клетка 2013, 25, 3159–3173. [CrossRef]

97. Fehér, A. Callus, Дедиференциация, Тотипотентност, Соматична ембриогенеза: Какво означават тези термини в ерата на молекулярната растителна биология? Преден. Plant Sci. 2019, 10, 536. [CrossRef]

98. Abdulhafiz, F. Технологии за растителни клетъчни култури: обещаващи алтернативи за производство на високостойностни вторични метаболити. арабски. J. Chem. 2022, 15, 104161. [CrossRef]

99. Дал Тосо, Р.; Melandri, F. Технология за растителна клетъчна култура: нов източник на съставки. ГРИЖА 2010, 28, 35–38.

100. Fremont, F. Клетъчна култура: новаторски подход за производство на растителни активни вещества; Russell Publishing Ltd.: Brasted, Великобритания, 2018 г.

101. Гао, W.-Y.; Wang, J.; Li, J.; Wang, Q. Производство на биомаса и биоактивни съединения от клетъчни суспензионни култури от Panax Quinquefolium L. и Glycyrrhiza Uralensis Fisch. В производството на биомаса и биоактивни съединения чрез биореакторна технология; Springer: Берлин/Хайделберг, Германия, 2014 г.; стр. 143–164.

102. Багери, Ф.; Тахвилян, Р.; Карими, Н.; Чалаби, М.; Azami, M. Shikonin Производство от Callus култура на Onosma Bulbotrichom като активна фармацевтична съставка. Иран. J. Pharm. Рез. IJPR 2018, 17, 495. [PubMed]

103. Гуо, С.; Ман, С.; Гао, В.; Liu, H.; Джан, Л.; Xiao, P. Производство на флавоноиди и полизахариди чрез добавяне на елиситор в различни процеси на клетъчно култивиране на Glycyrrhiza Uralensis Fisch. Acta Physiol. растение. 2013, 35, 679–686. [CrossRef]

104. Уанг, QJ; Zheng, LP; Сима, YH; Юан, HY; Wang, JW Метил жасмонат стимулира производството на 20-хидроксиекдизон в клетъчни суспензионни култури на „Achyranthes Bidentata“. Омика на растенията 2013, 6, 116–120.

105. Бимонте, М.; Тито, А.; Карола, А.; Барбулова, А.; Apone, F.; Colucci, G.; Cucchiara, М.; Hill, J. Dolichos Cell Culture Extract за защита срещу UV увреждане. Cosmet Toilet 2014, 129, 46–56.

106. Импарато, Г.; Casale, C.; Скамардела, С.; Urciuolo, F.; Бимонте, М.; Apone, F.; Colucci, G.; Netti, P. Нова конструирана дерма за in vitro изследване на фотоувреждането. J. Tissue Eng. Regen. Med. 2017, 11, 2276–2285. [CrossRef] [PubMed]

107. Вертуани, С.; Бегели, Е.; Скаламбра, Е.; Malisardi, G.; Копети, С.; Тосо, RD; Балдисерото, А.; Manfredini, S. Изследвания на активността и стабилността на Verbascoside, нов антиоксидант, в дермо-козметични и фармацевтични локални формулировки. Молекули 2011, 16, 7068–7080. [CrossRef]

108. Бимонте, М.; Карола, А.; Тито, А.; Барбулова, А.; Carucci, F.; Apone, F. Coffea Bengalensis за приложения против бръчки и тонизиране на кожата. Козмет. Тоалетна. 2011, 126, 644–650.

109. Юе, В.; Минг, К.; Лин, Б.; Рахман, К.; Zheng, C.-J.; Хан, Т.; Qin, L. Култури за клетъчна суспензия на лечебни растения: Фармацевтични приложения и стратегии с висок добив за желаните вторични метаболити. Крит. Rev. Biotechnol. 2016, 36, 215–232. [CrossRef]

110. Баенас, Н.; García-Viguera, C.; Moreno, DA Elicitation: Инструмент за обогатяване на биоактивния състав на храните. Молекули 2014, 19, 13541–13563. [CrossRef]

111. Васконсуело, А.; Boland, R. Молекулярни аспекти на ранните етапи на предизвикване на вторични метаболити в растенията. Plant Sci. 2007, 172, 861–875. [CrossRef]

112. Халдер, М.; Саркар, С.; Jha, S. Извличане: Биотехнологичен инструмент за подобрено производство на вторични метаболити в космати коренови култури. инж. Life Sci. 2019, 19, 880–895. [CrossRef] [PubMed]

113. Усман, Х.; Ула, Масачузетс; Jan, H.; Siddiquah, A.; Друе, С.; Anjum, S.; Giglioli-Guviarc'h, N.; Hano, C.; Abbasi, BH Интерактивни ефекти на монохроматични светлини с широк спектър върху фитохимичното производство, антиоксидантната и биологичната активност на Solanum Xanthocarpum Callus култури. Молекули 2020, 25, 2201. [CrossRef] [PubMed]

114. Д'Алесандро, Р.; Дочимо, Т.; Грациани, Г.; D'Amelia, V.; Де Палма, М.; Cappetta, E.; Tucci, M. Извикването на абиотични стресове потенцира продуктивността на Cardoon Calli като био-фабрики за производство на специализирани метаболити. Антиоксиданти 2022, 11, 1041. [CrossRef] [PubMed]

115. Чен, Р.; Li, Q.; Тан, Х.; Чен, Дж.; Xiao, Y.; Ма, Р.; Гао, С.; Zerbe, P.; Чен, В.; Zhang, L. Ген-към-метаболитна мрежа за биосинтеза на лигнани в предизвикани от MeJA Isatis Indigotica космати коренови култури. Преден. Plant Sci. 2015, 6, 952. [CrossRef]

116. Уен, Т.; Hao, Y.-J.; An, X.-L.; Sun, H.-D.; Li, Y.-R.; Чен, X.; Piao, X.-C.; Лиан, М.-Л. Подобряване на натрупването на биоактивни съединения в клетъчни култури на Orostachys Cartilaginous A. Bor. чрез предизвикване със салицилова киселина и ефект на клетъчния екстракт върху биоактивната активност. Производство на промишлени култури 2019, 139, 111570. [CrossRef]

117. Al-Khayri, JM; Naik, PM Елиситор-индуцирано производство на биомаса и фармацевтични фенолни съединения в клетъчна суспензионна култура на финикова палма (Phoenix Dactylifera L.). Молекули 2020, 25, 4669. [CrossRef]

118. Дуран, MDL; Забала, MEA; Londoño, GAC Оптимизиране на производството на флавоноиди в растителна клетъчна култура на Thevetia Peruviana, предизвикана с метил жасмонат и салицилова киселина. Браз. Арх. Biol. техн. 2021, 64, e21210022. [CrossRef]

119. Wongwicha, W.; Танака, Х.; Shoyama, Y.; Putalun, W. Извличането на метил жасмонат подобрява производството на глициризин в културите с космати корени на Glycyrrhiza Inflata. Z. Für Naturforschung C 2011, 66, 423–428. [CrossRef]

120. Шоджа, А.А.; Çirak, C.; Ganjeali, A.; Cheniany, M. Стимулиране на натрупването на фенолни съединения и антиоксидантна активност в in vitro култура на Salvia Tebesana Bunge в отговор на нано-TiO2 и метил жасмонатни елиситори. Култ на органна тъкан от растителна клетка. PCTOC 2022, 149, 423–440. [CrossRef]

121. Pilaisangsuree, V.; Сомбун, Т.; Tonglairoum, P.; Keawracha, P.; Wongsa, T.; Kongbangkerd, A.; Limmongkon, A. Подобряване на съединенията на стилбена и противовъзпалителната активност на метил жасмонат и циклодекстрин, предизвикани от фъстъчена коренова култура. Култ на органна тъкан от растителна клетка. PCTOC 2018, 132, 165–179. [CrossRef]

122. Ayoola-Oresanya, IO; Sonibare, MA; Gueye, B.; Абъртън, Монтана; Morlock, GE Извличане на антиоксидантни метаболити в Musa Species in Vitro Shoot Culture с помощта на захароза, температура и жасмонова киселина. Култ на органна тъкан от растителна клетка. PCTOC 2021, 146, 225–236. [CrossRef]

123. Мосават, Н.; Голкар, П.; Юсефифард, М.; Javed, R. Модулиране на растежа на калуса и вторичните метаболити в различни видове тимус и Zataria Multiflora, микроразмножени при стрес от ZnO наночастици. Биотехнология. Приложение Biochem. 2019, 66, 316–322. [CrossRef] [PubMed]

124. Али, А.; Мохамад, С.; Хан, MA; Раджа, NI; Ариф, М.; Камил, А.; Машвани, З.-Р. Сребърни наночастици, получени in vitro калусни култури за натрупване на биомаса и вторични метаболити в Caralluma Tuberculata. Artif. Клетъчна наномедицина, биотехнология. 2019, 47, 715–724. [CrossRef] [PubMed]

125. Chung, I.-M.; Rajakumar, G.; Thiruvengadam, M. Ефект на сребърни наночастици върху производството на фенолни съединения и биологични активности в космати коренови култури на Cucumis anguria. Acta Biol. Окачени. 2018, 69, 97–109. [CrossRef]

126. Джавед, Р.; Мохамед, А.; Ючесан, Б.; Гюрел, Е.; Каусар, Р.; Zia, M. CuO наночастици значително влияят в културата vitro, стевиол гликозиди и антиоксидантни активности на Stevia rebaudiana Bertoni. Култ на органна тъкан от растителна клетка. PCTOC 2017, 131, 611–620. [CrossRef]

127. Zigoneanu, IG; Astete, CE; Sabliov, CM Наночастици с уловен -токоферол: Синтез, характеризиране и контролирано освобождаване. Nanotechnology 2008, 19, 105606. [CrossRef] [PubMed]

128. Кроличка, А.; Лойковска, Е.; Станишевска, И.; Малински, Е.; Szafranek, J. Идентифициране на вторични метаболити в in vitro култура на Ammi Majus, третирана с елиситори. В сборника с доклади от IV Международен симпозиум за ин витро култура и градинарско развъждане, Тампере, Финландия, 2–7 юли 2000 г.; стр. 255–258.

129. Фазал, Х.; Abbasi, BH; Ахмад, Н.; Али, М.; Шуджаит Али, С.; Хан, А.; Уей, Д.-Кю. Устойчиво производство на биомаса и промишлено важни вторични метаболити в клетъчни култури на Selfheal (Prunella Vulgaris L.), предизвикани от сребърни и златни наночастици. Artif. Клетъчна наномедицина, биотехнология. 2019, 47, 2553–2561. [CrossRef] [PubMed]

130. Ян, Q.; Hu, Z.; Тан, RX; Wu, J. Ефективно производство и възстановяване на дитерпеноидни таншинони в коренови култури на Salvia Miltiorrhiza с адсорбция in situ, извличане и полу-непрекъсната операция. J. Biotechnol. 2005, 119, 416–424. [CrossRef]

131. Шакеран, З.; Keyhanfar, M.; Ghanadian, M. Биотично предизвикване за производство на скополамин от космати коренови култури на Datura Metel. Mol. Biol. Рез. Общ. 2017, 6, 169.

132. Лу, М.; Wong, H.; Teng, W. Ефекти от предизвикване върху производството на сапонин в клетъчна култура на Panax Ginseng. Plant Cell Rep. 2001, 20, 674–677. [CrossRef]

133. Шамс-Ардакани, М.; Hemmati, S.; Mohagheghzadeh, A. Ефект на елиситорите върху подобряването на биосинтезата на подофилотоксин в суспензионни култури на Linum Album. DARU J. Pharm. Sci. 2005, 13, 56–60.

134. Палазон, Дж.; Cusidó, RM; Бонфил, М.; Mallol, A.; Мояно, Е.; Morales, C.; Piñol, MT Извличане на различни фенотипове на трансформирани корени от Panax Ginseng за подобрено производство на гинзенозиди. Физиология на растенията. Biochem. 2003, 41, 1019–1025. [CrossRef]

135. Murthy, HN; Lee, E.-J.; Paek, K.-Y. Производство на вторични метаболити от клетъчни и органни култури: Стратегии и подходи за подобряване на биомасата и натрупване на метаболити. Култ на органна тъкан от растителна клетка. PCTOC 2014, 118, 1–16. [CrossRef]

136. Джавид, А.; Гампе, Н.; Гелана, Ф.; György, Z. Повишаване на натрупването на Rosavins в Rhodiola Rosea L. Растения, отглеждани in vitro чрез прекурсорно хранене. Агрономия 2021, 11, 2531. [CrossRef]

137. Ахмадиан Чашми, Н.; Шарифи, М.; Behmanesh, M. Lignan Enhancement in Hairy Root Cultures of Linum Album с помощта на Coniferaldehyde и Methylenedioxycinnamic Acid. подготовка Biochem. Биотехнология. 2016, 46, 454–460. [CrossRef]

138. Карпинен, К.; Hokkanen, J.; Толонен, А.; Матила, С.; Hohtola, A. Биосинтеза на хиперфорин и адхиперфорин от прекурсори на аминокиселини в култури от издънки на Hypericum Perforatum. Фитохимия 2007, 68, 1038–1045. [CrossRef]

139. Jeong, C.-S.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. Подобрено производство на гинзенозиди в суспензионни култури от женшен чрез стратегия за средно попълване. J. Biosci. Bioeng. 2008, 105, 288–291. [CrossRef]

140. Wu, C.-H.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. Подобрено производство на производни на кофеинова киселина в суспензионни култури от Echinacea Purpurea чрез стратегия за средно попълване. Арх. Pharm. Рез. 2007, 30, 945–949. [CrossRef]

141. Wang, C.; Wu, J.; Mei, X. Подобрено производство и освобождаване на таксол в суспензионни култури на Taxus ChinensisCell с избрани органични разтворители и хранене със захароза. Биотехнология. Прог. 2001, 17, 89–94. [CrossRef]

142. Ядав, Д.; Tanveer, A.; Малвия, Н.; Ядав, С. Преглед и принципи на биоинженерството: Двигателите на Omics технологиите. В Omics Technologies и Bio-Engineering; Elsevier: Амстердам, Холандия, 2018 г.; стр. 3–23.

143. Гонсалвес, С.; Romano, A. Производство на растителни вторични метаболити чрез използване на биотехнологични инструменти. Второ. Metab.-Sources Appl. 2018, 5, 81–99.

144. Васкес, SM; Abascal, GGW; Leal, CE; Кардино, Джорджия; Lara, SG Приложение на метаболитното инженерство за подобряване на съдържанието на алкалоиди в лечебните растения. Metab. инж. Общ. 2022, 14, e00194. [CrossRef] [PubMed]

145. Verpoorte, R.; Контин, А.; Memelink, J. Биотехнология за производство на растителни вторични метаболити. Phytochem. Rev. 2002, 1, 13–25. [CrossRef]

146. Оксман-Калдентей, К.-М.; Arroo, R. Регулиране на метаболизма на тропановите алкалоиди в растенията и растителните клетъчни култури. В метаболитно инженерство на растителния вторичен метаболизъм; Springer: Берлин/Хайделберг, Германия, 2000 г.; стр. 253–281.

147. Zhong, J.-J. Култура на растителни клетки за производство на паклитаксел и други таксани. J. Biosci. Bioeng. 2002, 94, 591–599. [CrossRef] [PubMed]

148. Сингх, Б.; Sharma, RA Вторични метаболити на лечебни растения, 4 тома: Етнофармакологични свойства, биологична активност и производствени стратегии; John Wiley & Sons: Hoboken, NJ, САЩ, 2020 г.; ISBN 3-527-34732-1.

149. Галих, PR; Esyanti, RR Ефект на имобилизацията върху клетъчния растеж и съдържанието на алкалоиди в клетъчно-агрегатната култура на Eurycoma Longifolia Jack. Int J Chem Env. Biol Sci 2014, 2, 90–93.

150. Джан, П.; Джоу, В.; Wang, P.; Wang, L.; Tang, M. Подобряване на производството на хитозаназа чрез клетъчна имобилизация на Gongronella Sp. JG. Браз. J. Microbiol. 2013, 44, 189–195. [CrossRef] [PubMed]

151. Премджет, Д.; Tachibana, S. Производство на подофилотоксин чрез имобилизирани клетъчни култури от Juniperus Chinensis. пак. J Biol Sci 2004, 7, 1130–1134.

152. Ванисри, М.; Lee, C.-Y.; Lo, S.-F.; Nalawade, SM; Лин, CY; Цай, Х.-С. Проучвания върху производството на някои важни вторични метаболити от лечебни растения от растителни тъканни култури. Bot Bull Acad Sin 2004, 45, 1–22.

153. Хюсеин, MS; Фарид, С.; Ансари, С.; Рахман, MA; Ахмад, IZ; Saeed, M. Текущи подходи към производството на вторични растителни метаболити. J. Pharm. Bioallied Sci. 2012, 4, 10. [CrossRef]

154. Малик, С.; Хосеин Мирджалили, М.; Fett-Neto, AG; Mazzafera, P.; Bonfill, M. Да живееш между два свята: двуфазови културни системи за производство на растителни вторични метаболити. Крит. Rev. Biotechnol. 2013, 33, 1–22. [CrossRef]

155. Лий-Парсънс, CW; Shuler, ML Ефектът от добавянето на Ajmalicine и времето за добавяне на смола върху производството на индолови алкалоиди от клетъчни култури на Catharanthus Roseus. Биотехнология. Bioeng. 2002, 79, 408–415. [CrossRef]

156. Комарая, П.; Рамакришна, С.; Reddanna, P.; Kishor, PK Подобрено производство на Plumbagin в имобилизирани клетки на Plumbago Rosea чрез предизвикване и in situ адсорбция. J. Biotechnol. 2003, 101, 181–187. [CrossRef]

157. Клвана, М.; Легрос, Р.; Jolicoeur, M. In situ, Стратегията за екстракция засяга потоците на производство на бензофенантридинов алкалоид в суспензионни култури на Eschscholtzia Californica. Биотехнология. Bioeng. 2005, 89, 280–289. [CrossRef] [PubMed]

158. Гао, М.-Б.; Джан, В.; Ruan, C. Значително подобрено производство на Taxuyunnanine C в клетъчни суспензионни култури на Taxus Chinensis чрез интензификация на процеса на повтарящо се предизвикване, хранене със захароза и адсорбция in situ. World J. Microbiol. Биотехнология. 2011, 27, 2271–2279. [CrossRef]

159. Чанг, Л.; Abdullah, MA Подобрено производство на антрахинони от третирани с адсорбент клетъчни суспензионни култури Morinda Elliptica в стратегия за производствена среда. Process Biochem. 2007, 42, 757–763. [CrossRef]

Отказ от отговорност/Бележка на издателя:Твърденията, мненията и данните, съдържащи се във всички публикации, са само на отделния автор(и) и сътрудник(и), а не на MDPI и/или редактора(ите). MDPI и/или редакторът(ите) се отказват от отговорност за всякакви наранявания на хора или собственост, произтичащи от идеи, методи, инструкции или продукти, посочени в съдържанието.

【За повече информация:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】