Поканен преглед: Значението на коластрата при новороденото млечно теле
Nov 13, 2023
РЕЗЮМЕ
Изключително важно е майчината коластра от говеда да се дава на новородените телета през първите им часове от живота. Коластрата е секретът, който кравата произвежда след инволюция на млечната жлеза и е богат на различни хранителни вещества. В допълнение към хранителната стойност за новородените телета, имуноглобулините представляват интерес поради тяхната роля в развитието на наивната имунна система на телетата при раждането. Процесът, чрез който телето придобива имунитет чрез усвояване на имуноглобулини, се определя като пасивен имунитет. Когато телета консумират достатъчно количество имуноглобулини, те се класифицират като притежаващи успешен пасивен имунитет (SPI). За разлика от това, ако са лишени от адекватна коластра, се счита, че са имали неуспешно предаване на пасивен имунитет (FPI). Прехвърлянето на пасивен имунитет се оценява чрез измерване на серумните концентрации на IgG на възраст от 24 до 48 часа. Основните фактори, които влияят върху това дали телето има SPI или FPI, са концентрацията на IgG в коластрата, изхранваното количество и възрастта на телето при хранене с коластра. Мониторингът на видимата ефективност на усвояването на имуноглобулини при телетата често се препоръчва за оценка на цялостните практики за управление на коластрата. Серумните IgG анализи могат да бъдат определени с директни (радиална имунодифузия) или индиректни (рефрактометрия) методи и използвани за оценка на разпространението на SPI или FPI.
cistanche tubulosa - подобряват имунната система
КеyWords:коластра, имуноглобулин, пасивен имунитет, радиална имунодифузия, рефрактометрия
ВЪВЕДЕНИЕ
Изследванията на пасивния трансфер на имунитета започват между 1892 и 1893 г. с работата на Пол Ерлих, който изучава как майчините антитела се прехвърлят на новородени животни. Ehrlich е първият, който прави разлика между активен и пасивен имунитет (Silverstein, 1996). При раждането телетата могат да абсорбират имуноглобулини от майчината коластра през тънките си черва, но затварянето на чревната пропускливост за тези протеини се ускорява, когато възрастта на телетата надхвърли 12 часа след раждането, и пропускливостта спира напълно на 24 часа след раждането (Stott et al., 1979b) . Това беше потвърдено от Буш и Стейли (1980), които заявяват, че спирането на абсорбцията на IgG от епителните клетки към кръвния поток се увеличава след 12-часова възраст с окончателно затваряне на 24-ия час. Затварянето на червата се определя, когато червата не са в състояние да абсорбират макромолекули и да ги прехвърлят в кръвообращението (Leece and Morgan, 1962). Ранните изследвания показват, че диетата не влияе върху затварянето на червата (Patt, 1977), но Stott et al. (1979a) обсъждат как храненето с коластра ускорява спирането и че лишените от коластра телета изпитват забавено затваряне на червата. Освен това, Stott et al. (1979b) обяснява, че храненето с коластра стимулира пиноцитозата, която е средството за транспортиране на имуноглобулини. Абсорбцията на макромолекулите започва да се изключва след това, въпреки че транспортът в кръвта все още е активен. Освен това, Stott et al. (1979b) съобщава, че затварянето на червата при телета е механизъм за минимизиране на абсорбцията на макромолекули след поглъщане на коластра. Точният механизъм, контролиращ тази пропускливост, не е ясен (Weaver et al., 2000); въпреки това се смята, че това затваряне на червата е резултат от изчерпването на пиноцитотичната активност или заместването на ентероцитите със зрели епителни клетки (Broughton и Lecce, 1970; Smeaton и SimpsonMorgan, 1985). Освен това е доказано, че ефективността на абсорбцията намалява с увеличаване на времето между раждането и първото хранене с коластра, което прави момента на предлагане на коластра на новородено теле от решаващо значение (Bush and Staley, 1980). Съвсем наскоро Fischer et al. (2018) съобщават, че забавянето на храненето с коластра след 6 часа след раждането намалява трансфера на IgG в сравнение с телета, хранени веднага след раждането, потвърждавайки, че телетата трябва да бъдат хранени веднага след раждането. Данните обаче показват, че телетата са способни да абсорбират IgG, когато са лишени от храна с коластра до 48 часа. По-конкретно, когато коластрата се дава за първи път на 6, 12, 24, 36 и 48 часа след раждането, съответно 65,8, 46,9, 11,5, 6,7 и 6,0% от общия погълнат IgG се появяват в плазмата (Matte et al., 1982 ). Наскоро Osaka et al. (2014) съобщават, че телета, хранени в рамките на 1, 1 до 6, 6 до 12 и 12 до 18 часа след раждането, имат видима ефективност на абсорбция (АЕА) стойности съответно от 30,5, 27,4, 23,7 и 15,8%. Друг фактор, за който е доказано, че влияе върху съзряването или затварянето на тънките черва, е IGF-1. Въпреки че ролята му в съзряването на червата не е ясно характеризирана (Pyo et al., 2020), известно е, че IGF-1 присъства в големи количества в майчината коластра и е един от 2-та най-разпространени растежни фактора, присъстващи в коластра заедно с IGF-2 на нива от 50 до 2,000 ug/L (Pakkanen и Aalto, 1997; Manila и Korhonen, 2002). Pyo и др. (2020) предположиха, че приемът на коластра може да повлияе на развитието на червата чрез повишаване на серумните концентрации на IGF-1. Въпреки това, Pyo et al. (2020) заключава, че храненето с коластра в продължение на 3 дни минимално повишава серумния IGF-1. В допълнение, Pyo et al. (2020) заключава, че повишаването на концентрациите на IGF-1 е по-вероятно свързано с повишеното количество енергия и консумация на хранителни вещества от коластрата, а не с развитието на червата. В допълнение към времето, основните фактори, които влияят върху абсорбцията на колострален имуноглобулин, са концентрацията на имуноглобулин в коластрата, общият обем на коластрата, предложена при първото хранене (Stott and Fellah, 1983), и по този начин общите грамове консумирани имуноглобулини и бактериалните нива в коластрата (Gelsinger et al., 2015). Въпреки че е обичайно изследователските проучвания да подчертават концентрацията на IgG като един от основните елементи в качеството на коластрата (Godden et al., 2009a; Elsohaby et al., 2017; Heinrichs et al., 2020), бактериалното замърсяване трябва да бъде включено като негово присъствие в коластрата има потенциално отрицателни ефекти върху новородените телета (Gelsinger et al., 2015). Топлинната обработка на коластрата може да подобри абсорбцията на IgG и да повиши плазмената концентрация на IgG с 18,4% (Gelsinger et al., 2014), като същевременно е отличен метод за намаляване на бактериалните популации в коластрата (Heinrichs et al., 2020). Независимо от това, трябва да се има предвид, че термичната обработка трябва да бъде строго контролирана, тъй като нейната продължителност може да повлияе на високото и ниското съдържание на протеини в коластрата от говеда (Tacoma et al., 2017). Такома и др. (2017) споменават, че промените в протеома могат да повлияят на развитието на телетата, когато биоактивните компоненти са намалени. Въпреки това, не са докладвани данни, които да показват отрицателни ефекти върху телета от хранене с топлинно обработена коластра. Съобщава се, че нагряването на коластрата при 60 градуса за 30 или 60 минути минимално намалява или не засяга концентрацията на IgG, намалява броя на бактериите и не влияе на вискозитета (Johnson et al., 2007; Elizondo-Salazar et al., 2010) .
Cistanche ползи за мъжете - укрепване на имунната система
Когато телетата не получават достатъчно имуноглобулин, те се класифицират като имащи недостатъчност на пасивния имунитет (ФПИ; Lombard et al., 2020), което ги излага на по-голям риск от заболяване през първите седмици от живота (Renaud et al., 2018; Todd et al., 2018). Счита се, че телетата имат FPI, когато тяхната серумна концентрация на IgG е<10 mg/mL at 24 h of age (Besser et al., 1991; Furman Fratczak et al., 2011; Shivley et al., 2018). In contrast, they are considered to have successful passive immunity (SPI; Lombard et al., 2020) when their serum IgG concentration is >10 mg/mL at 24 h (Weaver et al., 2000; Quigley, 2004; Godden, 2008). Recent studies have discussed that higher serum IgG thresholds to determine FPI should be evaluated. For example, Urie et al. (2018b) stated calves with serum IgG levels >15 mg/mL have reduced morbidity and mortality rates in comparison with the standard cutoff point of 10 mg/ mL IgG that is currently used. Similarly, Furman Fratczak et al. (2011) concluded that calves with serum IgG levels >15 mg/mL did not develop respiratory infections. Reports evaluating beef calves have recommended that serum IgG values of >24 and >27 mg/mL намаляват нивата на заболеваемост и водят до повишени печалби на BW (Dewell et al., 2006; Waldner and Rosengren, 2009). Lombard и др. (2020) наскоро предложи терминът трансфер на пасивен имунитет (ТПИ) трябва да замени по-често срещания термин пасивен трансфер, тъй като прехвърленият имунитет е пасивен, но не и абсорбцията на имуноглобулини. В допълнение, Lombard et al. (2020) въведе нов TPI стандарт, който включва следните 4 дефинирани категории серумен IgG: отличен, добър, задоволителен и лош със серумни нива на IgG по-големи или равни на 25. 0, 18,0 до 24,9, 10,0 до 17,9 и<10.0 mg/mL, respectively. They suggested that on a herd level, >40, 30, 20 и 10% от телетата трябва да бъдат съответно в категориите отличен, добър, добър и лош TPI. Храненето с коластра е важен компонент от програмите за управление на телетата (Godden, 2008). Въпреки това, когато прясната майчина коластра не е налична при раждането или не е с високо качество, фермерите имат алтернатива да използват заместители на коластрата (CR) or colostrum supplements (Lopez et al., 2020a). Colostrum products are considered replacement feeding when they provide >100 g IgG на доза (McGuirk и Collins, 2004; Foster et al., 2006). Продукти с коластра, съдържащи<100 g of IgG per dose are considered supplements and are not a complete replacement for maternal colostrum feeding (Quigley et al., 2002). Colostrum replacers should not replace high-quality maternal colostrum feeding but have been determined to provide a valid alternative for immunoglobulins with no negative effect on calf performance (Lago et al., 2018). In contrast, colostrum supplements do not contain sufficient IgG to replace maternal colostrum and are formulated to be given in conjunction with colostrum to enhance IgG concentration (Quigley, 2004; Jones and Heinrichs, 2006).
cistanche tubulosa - подобряват имунната система
Щракнете тук, за да видите продуктите Cistanche Enhance Imunity
【Попитайте за повече】 Имейл:cindy.xue@wecistanche.com / Whats App: 0086 18599088692 / Wechat: 18599088692
ЗНАЧЕНИЕ НА КОЛАСТРАТА
Хранене
Новородените телета се нуждаят от висококачествена коластра, ако искат да абсорбират достатъчно имуноглобулини, за да постигнат успешен TPI (Morin et al., 2021a,b). Коластрата е първият секрет, който кравата произвежда след инволюция на млечната жлеза. Коластрата от говеда се произвежда и натрупва по време на късна бременност в процес, определен като колострогенеза (Baumrucker и Bruckmaier, 2014). Съобщава се, че образуването на коластра започва 3 до 4 седмици преди отелването и спира внезапно преди раждането (Brandon et al., 1971). Независимо от това, точното време, когато коластрата се образува в отделните крави, не е известно, което може частично да обясни големите различия, наблюдавани в качеството на коластрата (Kehoe et al., 2007; Baumrucker et al., 2010). Коластрата се състои главно от имуноглобулини, които осигуряват имунитет на телето през първите седмици от живота. В допълнение, това е първото снабдяване с хранителни вещества за телето при раждането и допринася за защитата на червата срещу патогени (Foley and Otterby, 1978; Davis and Drackley, 1998; Calloway et al., 2002). Коластрата е концентриран източник на хранителни вещества с 1,85 пъти DM, 4,52 пъти повече протеини, 1,68 пъти повече мазнини и по-високи концентрации на минерали и витамини от пълномасленото мляко (Foley and Otterby, 1978). В допълнение към лактозата, коластрата от говеда също съдържа малки количества от някои други захари (т.е. глюкоза, фруктоза, глюкозамин и галактозамин) и олигозахариди (Gopal and Gill, 2000). Коластрата е източник на енергия за телета през първите часове от живота, тъй като те се раждат с ограничени енергийни резерви (Morrill et al., 2012). Само 3% от телесното тегло на новороденото теле е липидно и то е предимно структурно, което ограничава наличността му за метаболизъм от телето (Morrill et al., 2012). В резултат на това телетата зависят от липидите и лактозата, присъстващи в майчината коластра, като източник на енергия през първите часове от живота си (Morrill et al., 2012). Коластрата също така съдържа въглехидрати, различни други протеини, растежни фактори, ензими, ензимни инхибитори, нуклеотиди, нуклеозиди, цитокини и мазнини. (McGrath et al., 2016). В допълнение, коластрата от говеда съдържа основни витамини и минерали, включително калций, магнезий, желязо, манган, цинк, витамин Е, витамин А, рибофлавин, каротин, витамин В12, фолиева киселина, холин и селен (Foley and Otterby, 1978 г.). ; Hammon et al., 2000). Мастноразтворимите витамини се считат за важен компонент на коластрата; обаче, водоразтворимите витамини не са изследвани в същата степен (Kehoe et al., 2007). Двете основни съединения на витамин Е включват токофероли и токотриеноли (Morrissey and Hill, 2009). Въпреки това, въпреки че токоферолите могат да преминат през плацентата и да се съхраняват от плода, новородените телета имат ниски нива на токоферол при раждането и се нуждаят от поглъщане на коластра, за да компенсират (Zanker et al., 2000). Известно е, че добавянето на витамини, като например мастноразтворими витамини, по време на сухостойния период на майката повишава техните концентрации в коластрата (Weiss et al., 1990). По-конкретно, Weiss et al. (1990) установяват, че добавянето на витамин Е за приблизително 60 дни повишава нивата на токоферол в коластрата. Parrish и др. (1949) споменават, че добавката на токоферол при кравите повишава нивата на витамин А в коластрата. Коластрата съдържа и витамин D, който се синтезира от кравите при излагане на UV радиация (Bulgari et al., 2013). Фишер-Тлустос и др. (2020) съобщават, че коластрата при първо доене и преходното мляко имат повишени концентрации на някои олигозахариди, включително 3'-сиалил лактоза и 6'-сиалил лактоза, в сравнение с млякото, и те заявяват, че те имат благоприятни ефекти за телето като защита на чревния тракт мукоза чрез прилепване към бактерии (Martín et al., 2002). Като цяло майчината коластра осигурява както хранителни, така и нехранителни фактори, които помагат на имунната система да стане активна, да узрее червата и да насърчи развитието на органи (Hammon et al., 2020).
Компонентите на коластрата могат да варират в зависимост от фактори като порода, равенство, хранене преди раждането, продължителност на сухия период, диета, възраст на животното и предишна експозиция на заболяване (Parrish et al., 1948; Tsioulpas et al., 2007; Mann et др., 2016). В допълнение, факторите на околната среда и взаимодействието на млечната жлеза с определени патогени могат да повишат концентрациите на имунния фактор в млякото (Barrington et al., 1997; Stelwagen et al., 2009). Национална оценка на качеството на коластрата в млечни ферми в САЩ, извършена от Morrill et al. (2012) подкрепиха Parrish et al. (1948) и Tsioulpas et al. (2007) относно повишаването на концентрацията на IgG с увеличаване на паритета на кравата (42,4, 68,6 и 95,9 mg/mL съответно при първа, втора и трета лактация). Въпреки това, тази оценка заключава, че 60% от майчината коластра в млечните ферми в САЩ е неадекватна, като се има предвид концентрацията на IgG и общия брой на бактериите (Morrill et al., 2012). Резултати от Kehoe et al. (2007), Swan et al. (2007), Baumrucker et al. (2010) и Morrill et al. (2012) съобщават за голямо разнообразие на средните концентрации на IgG в коластра и други компоненти. Baumrucker и Bruckmaier (2014) прегледаха и подчертаха екстремните вариации на концентрациите на IgG в коластрата между кравите. Компоненти като мазнини, протеини, лактоза и общо количество твърди вещества също са докладвани със значителни диапазони (Kehoe et al., 2007; Morrill., et al., 2012). Мазнините могат да варират от 1 до 26,5%, лактозата от 1,2 до 5,2%, протеините от 2,6 до 22,6% и общото сухо вещество от 1,7 до 43,3% (Kehoe et al., 2007; Morrill., et al., 2012). По-скорошен преглед на състава на коластрата от McGrath et al. (2016) включва компоненти като растежни фактори (т.е. епидермален растежен фактор, IGF-1 и IGF-2), цитокини, минерали и pH, където обобщават как тези компоненти са променливи в коластрата в сравнение със зряло мляко.
При раждането телетата имат незряла имунна система, тъй като структурата на плацентата на майката предотвратява трансфера на IgG от серума на майката към телето (Davis and Drackley, 1998). Говедата имат синдесмохориална плацента с 3 майчини и 3 фетални слоя, които действат като бариери и пречат на трансфера на имуноглобулини (Blum и Baumrucker, 2008; Peter, 2013). В резултат на това телетата се раждат с дефицит на антитела и зависят от поглъщането на коластра, за да придобият имуноглобулини (Davis and Drackley, 1998; Calloway et al., 2002). Адекватното хранене с коластра ще определи дали новороденото изпитва SPI или FPI. Неуспехът на пасивния имунитет е свързан с повишена смъртност и заболеваемост при телетата (Furman Fratczak et al., 2011; Urie et al., 2018b). Предишни доклади показват нива на смъртност и заболеваемост в САЩ от 7,8 и 38,5% (USDA, 2010 г.), които са по-високи от препоръчаните насоки от 5 и 25% за смъртност и заболеваемост (Асоциация на млечните телета и юници, 2010 г.). Освен това, Lora et al. (2018) съобщават, че ниските нива на FPI влияят върху появата на чревни заболявания. Лора и др. (2018) демонстрират по-висок риск от разпространение на ротавирус и Cryptosporidium spp. инфекции, както и общата честота на диария при телета с FPI. Освен това е доказано, че адекватното хранене с коластра може да има положителен дългосрочен ефект върху животното, тъй като имуноглобулините, погълнати от коластрата, могат да имат ефект върху производството и бъдещия растеж (Denise et al., 1989). Показано е, че второто хранене с коластра 5 до 6 часа след раждането намалява заболеваемостта и подобрява ADG преди отбиването (Abuelo et al., 2021). Въпреки това, Cuttance et al. (2019) съобщават, че FPI не е имал ефект върху производителността, включително производството на мляко, растежа, възпроизводството и ефективността на лактацията. За да се осигурят високи концентрации на IgG, коластрата трябва да бъде събрана за първото доене веднага след раждането, тъй като качеството на коластрата се влошава при следващите доене (Stott et al., 1981). Доказано е, че IgG намалява в събраната коластра, когато интервалът от време между отелването и събирането на коластра се увеличава (Morin et al., 2010). По-конкретно, коластрата има по-високи концентрации на IgG, когато се събира в рамките на 2 часа след раждането, тъй като концентрацията на коластрален IgG е значително намалена, когато се събира на 6, 10 и 14 часа след отелването (Moore et al., 2005). В ранните доклади се посочва, че са необходими 300 до 400 g имуноглобулини за пълна защита на новородените срещу патогени (Roy, 1980). Въпреки това, настояща препоръка е, че 150 до 200 g IgG трябва да бъдат хранени при раждането на телетата, за да постигнат SPI (Chigerwe et al., 2008), но Godden et al. (2019) предлагат хранене с обща маса над 300 g. Дори ако телето постигне SPI чрез поглъщане на коластра, наложително е да се отбележи, че имунитетът на телето ще зависи не само от постигането на SPI, но и от баланса между неговия имунен статус и излагането на патогени в неговата среда, включително управление и хранене.
cistanche tubulosa - подобряват имунната система
ИМУНОГЛОБУЛИНИ И ДРУГИ КОМПОНЕНТИ В КОЛАСТРАТА
Прехвърлянето на имуноглобулини от кръвния поток на кравата в коластрата става чрез вътреклетъчен транспортен механизъм. Има епителни рецептори, които улесняват прехвърлянето на IgG от кръвта към млечната жлеза (Larson et al., 1980). Като цяло, имуноглобулините са основните имунни компоненти, присъстващи в коластрата от говеда (Stelwagen et al., 2009). Преобладаващият имуноглобулин в коластрата, IgG1, се улавя от извънклетъчната течност и се транспортира до луминални секрети (Larson et al., 1980). Цялостният процес на транспортиране на имуноглобулини започва 5 седмици преди раждането и достига своя пик 1 до 3 дни преди раждането (Sasaki et al., 1976). Буш и др. (1971) и Oyeniyi и Hunter (1978) съобщават, че концентрациите на IgG в коластрата намаляват с последователни доене след раждането, което прави първото доене след раждането с най-високо съдържание на IgG. Намаляването на съдържанието на IgG е показано от Morin et al. (2010) да бъде в размер на 3,7% за всеки следващ час събиране на коластра след раждането. Независимо от това, тъй като IgG все още може да се намери в по-късните следродилни доене (Stott et al., 1981), коластрата от второ и трето доене все още може да бъде полезна за телета, когато е налична. Например, Lopez et al. (2020a) съобщават за липса на FPI при телета, хранени с коластра при второ и трето доене, допълнена с 40 g CR като първо хранене. Коластрата от говеда обикновено съдържа висока концентрация на имуноглобулини, по-специално IgG, отколкото други видове имуноглобулини. Класът IgG е основният клас имуноглобулин, който се прехвърля чрез коластрата, по-специално подкласът IgG1, както беше споменато по-горе. Съотношението на IgG1 към IgG2 в коластрата е около 7:1, а коластрата също така съдържа IgA и IgM в по-малки количества (Butler et al., 1974). В допълнение коластрата от говеда съдържа жизнеспособни левкоцити (т.е. неутрофили и макрофаги), които допринасят за частта от имунните компоненти на млечните секрети. Концентрацията на говежди IgG варира от 50 до 150 mg/mL, от които приблизително 85 до 95% са IgG, 7% са IgM и 5% са IgA (Butler, 1969; Sasaki et al., 1976; Larson et al., 1980). ). Този диапазон е докладван и в специфични проучвания като Morin et al. (2010), където концентрациите на IgG варират от<10 to 120 g/L, and total masses produced ranged from 11 to 681 g. However, it must be appreciated that these percentages can vary greatly among cows. A study conducted by Newby et al. (1982) reported concentrations of IgG, IgA, and IgM of 75, 4.4, and 4.9 mg/mL, respectively. The mammary gland regulates the different immunoglobulin class concentrations in colostrum, although the mammary epithelium is generally not involved in their synthesis (Stelwagen et al., 2009). These immunoglobulins appear or can enter the colostrum via a paracellular route from intracellular tight junctions (Lacy-Hulbert et al., 1999), but the majority enter through a selective receptor-mediated intracellular route (Stelwagen et al., 2009). However, the mammary gland regulates the immunoglobulin concentrations present in colostrum and also contributes to immunoglobulin appearance by in situ production of its intramammary plasma cells (Stelwagen et al., 2009). The source of different immunoglobulins could be blood-derived or synthesized by intramammary plasma cells (Stelwagen et al., 2009). Overall, the main function of all these types of immunoglobulins is to detect the presence of pathogens present in the calf and eventually protect the animal against them. In general, immunoglobulins are monomeric glycoproteins with high molecular weight and composed of 4-chain molecules, with 2 light (short) and 2 heavy (long) polypeptide chains attached by disulfide bonds (Butler, 1969; Larson, 1992). The IgG class is the major immunoglobulin transferred via colostrum (85–90%). However, IgG1 represents 80 to 90% of total IgG (Butler et al., 1974; Sasaki et al., 1976, Larson et al., 1980). Immunoglobulin G is involved in various activities such as bacterial opsonization and binding to pathogens to inactivate them (Lilius and Marnila, 2001). Immunoglobulin G1 is the primary protein involved in the TPI (Butler, 1969; Butler et al., 1974). The role of IgM is to identify and destroy bacteria present in the calf's bloodstream; it functions as a mechanism to fight septicemia and is the principal agglutinating antibody. In addition, IgM has been identified to be the first immunoglobulin to appear in the B lymphocytes (Klein, 1982) and to play a role against mastitis when present in milk (Frenyo et al., 1987). The role of IgA is to prevent the attachment of pathogens and entrance into the intestine by protecting the mucosal membranes (Butler, 1969, 1983; Larson et al., 1980; Blättler et al., 2001; Răducan et al., 2013). Immunoglobulin E is also found in colostrum, though it is only known for its contribution to skin-sensitizing activity (Butler, 1983). In general, some reports mention that calves start producing their own antibodies, or endogenous production, at approximately 3 wk of age (Devery et al., 1979; Kertz et al., 2017). When determined by clearance of 125I-labeled IgG1, passively acquired IgG has an estimated half-life of 11.5 to 17.9 d (Besser, 1993; Besser et al., 1988; Sasaki et al., 1977). In addition, Murphy et al. (2014) reported that the half-life of IgG derived from maternal colostrum was longer than from CR. They reported that IgG from colostrum had a half-life of 28.5 d and IgG from CR had a half-life of 19.1 d. Nevertheless, Quigley et al. (2017) reported a higher half-life of 23.9 d for calves fed a CR that was followed by an increase until week 8. It has to be considered that Quigley et al. (2017) fed a high dose of total IgG, 450 g, which may have contributed to this higher half-life. This change in IgG level is due to normal catabolism the molecules experience (Matte et al., 1982). Macdougall and Mulligan (1969) mentioned that this catabolism rate is about 6% per day for the first 14 days of life of a newborn calf. Lopez et al. (2020b) fed either colostrum, CR, or a mixture and showed a linear decrease in IgG levels from initial levels at 24 h to nadir was 0.44 mg/mL per day for all treatments. Moreover, Quigley et al. (2017) discussed that the increase of IgG they observed from 4 wk until 8 wk could be associated with a higher IgG de novo synthesis rather than the decay of IgG derived from maternal concentrations. However, others report that endogenous production depends on IgG consumption. Husband and Lascelles (1975) and Pauletti et al. (2003) have discussed that calves that are not fed colostrum or any source of immunoglobulins experience earlier endogenous antibody production than colostrum-fed calves.
Hallberg et al. (1995) and Andrew (2001) described that colostrum has a higher SCC than regular milk. This increase in SCC is not due to mastitis infection or disease but a result of a physiological feature described as the passage of cells through gaps in the junctions of mammary epithelial cells (Nguyen and Neville, 1998). A study conducted by Ontsouka et al. (2003) demonstrated this SCC difference between colostrum and mature milk. The results reported a mean SCC for colostrum at d 2 of 1,479,000 ± 585,000 cells/mL compared with a mean SCC of mature milk (wk 4) of 41,000 ± 15,000 cells/mL. Bovine colostrum can also be a source of pathogens to a newborn calf, such as Escherichia coli, Salmonella spp., Mycoplasma spp., and Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis (Houser et al., 2008). These pathogens originate from cow mammary gland infections, improper colostrum storage or handling, and incorrect colostrum harvest (Streeter et al., 1995; Stewart et al., 2005). Colostrum is considered to be of good quality when its IgG concentration is >50 mg/mL, бактериалният брой е<100,000 cfu/mL and coliform counts are <10,000 cfu/mL (McGuirk and Collins, 2004; Chigerwe et al., 2008).
Друг компонент, който представлява интерес, са концентрациите на инхибитор на трипсин в коластра от говеда поради възможния му принос за инхибиране на протеолитичното разграждане на някои компоненти (Quigley et al., 2005a). Изглежда, че инхибиторът на трипсин запазва активността и благоприятства усвояването на компонентите на коластрата (Hernández-Castellano et al., 2014). Въпреки това, трябва да се има предвид, че въпреки че топлинната обработка на коластрата може да бъде от полза (Gelsinger et al., 2015; Saldana et al., 2019), тя също така намалява концентрациите на трипсин инхибитор (Mann et al., 2020). Концентрациите на трипсин инхибитор в коластрата след раждането са високи в сравнение със зрялото мляко и намаляват приблизително една стотна с 2 седмици след раждането (Sandholm и Honkanen-Buzalski, 1979). Куигли и др. (1995a) докладват концентрации на трипсин инхибитор в майчината коластра от 56 mg, което се отчита като милиграми инхибиран трипсин на децилитър коластра. Те заявяват, че наличието на инхибитори на трипсин е свързано с общите имуноглобулини (r=0.54), мазнини, общ N (r=0.70), протеин N (r=0.70 ), неказеин N (r=0.64) и TS (r=0.66) в коластрата. Куигли и др. (1995a) заключава, че коластрата с по-високо съдържание на имуноглобулин има по-високо съдържание на трипсин инхибитор и обратното, коластрата с ниско качество има по-малко съдържание на трипсин инхибитор, което може да повлияе на TPI. Куигли и др. (1995b) установяват, че добавянето на 1 g инхибитор на трипсин от соя към 1 L коластра, хранена с новородени телета Jersey, повишава серумните концентрации на IgG от 27,9 до 34,4 mg/mL. В допълнение към инхибиторите на трипсин, други представляващи интерес компоненти са лактоферин и трансферин; които са желязо-свързващи протеини (Jenness, 1982). Установено е, че концентрациите на трансферин и лактоферин са по-високи в коластрата при първото доене (съответно 1,07 и 0,83 mg/mL) в сравнение с последващите доене, където концентрациите са почти незначителни около 3 седмици след раждането (0,02 и 0,09 mg/mL , съответно; Sánchez et al., 1988). Смята се, че една от биологичните функции на тези компоненти е свързана със селекцията на чревната флора на новороденото (Ribadeau-Dumas, 1983).
cistanche tubulosa - подобряват имунната система
АБСОРБЦИЯ НА IgG В НОВОРОДЕНОТО ТЕЛЕ
Коластрата трябва да се дава веднага след раждането на телето и да не се отлага, за да се осигури защитен пасивен имунитет (Fischer et al., 2018). Новородените телета все още не са развили своята имунна система при раждането (Nocek et al., 1984; Stelwagen et al., 2009). Важно е новородените да се хранят с коластра при първото доене, тъй като колостралните концентрации на IgG, M и A намаляват с различна скорост, тъй като броят на доенията след раждането се увеличава (Stott et al., 1981). Времето на хранене с коластра е от решаващо значение за постигане на високи нива на усвояване на IgG. Прехвърлянето на имуноглобулини от коластрата в кръвния поток на телето се дължи на временна способност за абсорбиране на протеини в червата през първите часове от живота. Приблизително 24 часа след раждането клетките в червата вече не могат да абсорбират и транспортират тези имуноглобулини или други големи молекули. Това затваряне на пропускливостта е докладвано от McCoy et al. (1970) в проучване, което демонстрира, че храненето с коластра 24 часа след раждането не променя нивото на серумния глобулин. В резултат на това може да се предположи, че червата са били непропускливи за коластрални протеини в този момент и че храненето с коластра 24 часа след раждането е неподходящо. Обикновено процентът на общите антитела, абсорбирани в кръвния поток, AEA, от коластрата варира от 20 до 35%, дори ако е осигурена висококачествена коластра (Quigley and Drewry, 1998; Jones and Heinrichs, 2006). Въпреки това AEA варира в различните проучвания и някои доклади показват стойности извън този диапазон. Например, Lago et al. (2018) съобщават за диапазон от 32,6 до 76,9% със средна стойност от 35,9% за телета, хранени с майчина коластра с концентрация на IgG от 63,6 g/L. Също така, Halleran et al. (2017) съобщават за диапазон между 10 и 50% и липса на връзка между общото количество на хранени IgG и AEA. Въпреки това, те оцениха теглото на телето и използваха приблизителен плазмен обем от 7%, като и двете можеха да повлияят на заключенията им. Фишер и др. (2018) заявява, че забавянето на храненето с коластра с 6 или 12 часа засяга пасивния трансфер на IgG и че забавянето на храненето с коластра за разлика от храненето при раждането може да повлияе на затварянето на чревната пропускливост и да намали AEA. Някои от основните фактори, които допринасят за масата на IgG, абсорбирана от телетата, са качеството (концентрацията на IgG) и количеството (обемът на изхранване) на коластрата, предоставена след раждането (Godden, 2008). В допълнение към храненето с коластра, за да се осигури SPI при новородени телета, трябва да се практикуват адекватни практики за управление, за да се сведат до минимум нивата на заболеваемост (Quigley et al., 2017).
Като цяло имуноглобулините се абсорбират в епитела на тънките черва на новороденото, преминават през лимфната система и накрая навлизат в системното кръвообращение през гръдния канал (Comline et al., 1951; Bush and Staley, 1980; Besser and Gay, 1994) . Съществува комбинация от изчистване на имуноглобулини и начало на ендогенно производство в системата на телетата. Смята се, че новородените изчистват приблизително 70% от погълнатия IgG през чревния лумен (Besser et al., 1988). Освен това, имуноглобулини са открити в стомашно-чревния тракт, където те функционират като свързващи антигени (Besser et al., 1988). Смята се, че телетата започват своя ендогенен синтез на IgG между 36 часа и 3 седмици на възраст (Devery et al., 1979). Проучвано е обаче, че телета, лишени от коластра или телета, които не са хранени с достатъчно коластра, започват да произвеждат антитела по-рано в живота (Husband and Lascelles, 1975) и че те вече имат клетъчно-медииран имунен отговор, подобен на възрастна крава на приблизително 2 години седмица на възраст (Barrington and Parish, 2001). Comline и др. (1951) поставят канюла на новородени телета Jersey в дванадесетопръстника, цекума и гръдния канал и прилагат обезмаслена коластра директно в червата, за да изследват пътя на абсорбция на имуноглобулините. Те откриха, че глобулините не се транспортират директно до порталната циркулация, а по-скоро се транспортират в лимфата и след това в периферната кръв. По-конкретно, разбира се, че абсорбцията на имуноглобулин в червата е неселективна и се осъществява чрез механизъм на пиноцитоза (Besser and Gay, 1994). Стейли и др. (1972) споменаха, че червата имат определено ниво на селективност; те обаче заключиха, че въпреки че червата на новороденото могат да абсорбират или са пропускливи за хетероложни протеини, те не абсорбират феритин. По същия начин, Bush и Staley (1980) също споменават, че абсорбцията на имуноглобулини в червата се извършва от апикална тубулна система, абсорбираща само определени вещества. Има фактори, за които е доказано, че взаимодействат с IgG. Например, бактериалното замърсяване, присъстващо в коластрата, може да повлияе на абсорбцията, тъй като бактериите могат да се свържат с тази молекула и по този начин да повлияят на нейната абсорбция (Gelsinger et al., 2014). Този проблем е решен чрез топлинна обработка на коластра, където е доказано, че повишава серумните концентрации на IgG на 24-ия час при новородени телета (Gelsinger et al., 2014, 2015; Saldana et al., 2019). Трябва също така да се има предвид, че не всички имуноглобулини влизат или могат да бъдат открити в системното кръвообращение, тъй като някои могат да поемат по други пътища, а не в плазмата или да бъдат екскретирани в изпражненията (Matte et al., 1982).
МЕТОДИ НА ХРАНЕНЕ С КОЛАСТРА
Производителите трябва да вземат предвид количеството коластра, което дават, за да осигурят SPI при новородени телета. За да осигурят достатъчна консумация на коластра, производителите не трябва да разчитат на коластрата, която телето може да суче от майка си (McCoy et al., 1970), тъй като не е възможно да се измери обемът и времето след раждането, когато телето е консумирало коластра. Това забавяне на времето, когато телето може да суче, е от решаващо значение, тъй като забавеното бозаене за 2 до 6, 7 до 12, 13 до 24 или 25 до 48 часа има смъртност съответно от 5, 8, 11 и 20% ( Маргерисън и Дауни, 2005). Докладвано е, че 25 до 30% от телетата не успяват да сучат от майка си до 6 часа, а приблизително 20% не успяват да сучат до 18 часа (Moran, 2012). Това демонстрира как само позволяването на телето да суче коластра от майка си може да повлияе на неговия FPI (Besser et al., 1991) поради неуспеха на телето доброволно да консумира достатъчно коластра. Интересното е, че Stott et al. (1979a) съобщават, че скоростта на абсорбция и максималната абсорбция на IgG са по-добри при телета, които сучат коластра от майка си в сравнение с телета, хранени от бутилка. Stott et al. (1979a) и Selman et al. (1971) предположиха, че има майчински ефект, който се предава на телето при сукането на прясна коластра. Този ефект може да действа като сигнален фактор, който може да стимулира активността на абсорбиращите клетки в чревния епител; обаче няма достатъчно доказателства в подкрепа на това (Stott et al., 1979a). Освен това, в повечето доклади, телетата, на които е разрешено само да кърмят майка си, имат по-ниски серумни концентрации на IgG и са по-податливи на болести, отколкото ръчно хранените телета (Brignole and Stott, 1980; Nocek et al., 1984; Besser et al., 1991). Haines и Godden (2011) оценяват ефектите от майчинството чрез извършване на изкуствено майчинство, което включва вербална и физическа стимулация на новородените телета. Те не съобщават за разлики в абсорбцията на IgG между телета, които са получили изкуствено майчинство или не (съответно 15 и 13,9 mg/mL).
Майчината коластра може да бъде хранена чрез шише със зърна, кофа или езофагеална хранилка (Jones and Heinrichs, 2006). Използването на езофагеална хранилка често се препоръчва поради големия обем необходима течност. Най-разпространеният метод за хранене е бил ръчно хранене от кофа или бутилка със зърна (64%), а най-малко разпространеният е използването на езофагеална хранилка (2,3%; Heinrichs et al., 1994). По-нови данни от NAHMS (2014) съобщават, че 81,6, 15,7 и 2,7% от телетата юници са били хранени само чрез ръчно хранене (включително чрез езофагеална хранилка), съответно както ръчно хранене, така и кърмачка и само кърмачка. Всички видове хранене с коластра имат капацитета да осигурят на новороденото необходимото и достатъчно количество хранителни вещества и имуноглобулини, ако се вземат предвид правилните параметри на качеството на коластрата и изхранения обем (Roy, 1972). Съществуват обаче рискове при използването на езофагеална хранилка с неправилно поставяне в прасеца, увреждане на хранопровода или, което е по-важно, аспирация на течност в белите дробове (Jones and Heinrichs, 2006). Съобщава се, че храненето на коластра чрез езофагеална хранилка на новородени телета е спестяващ време и оптимален метод за постигане на успешен пасивен трансфер на IgG. (LateurRowet and Breukink, 1983; Elizondo-Salazar et al., 2011). Въпреки това, един потенциален недостатък, свързан с този метод, е, че рефлексът на хранопровода не се появява, когато телетата се хранят с езофагеални хранилки. Всеки път, когато телетата не изпитват рефлекс на хранопровода, коластрата навлиза в предстомаха преди абомасума и след това навлиза в тънките черва. За разлика от това, ако телето суче от майка си или се храни чрез бутилка със зърна, възниква рефлексът на хранопровода и коластрата отива директно в абомасума, което води до по-бърз транспорт до тънките черва. Въпреки това, когато телетата се хранят чрез езофагеална хранилка, преминаването на коластрата от предстомаха (reticulorumen) до абомасума става в рамките на няколко минути и не засяга абсорбцията на имуноглобулини (Lateur-Rowet and Breukink, 1983). Елизондо-Салазар и др. (2011) проведоха проучване, за да сравнят дали има разлики в усвояването на IgG между телета, хранени с коластра чрез бутилка със зърна или езофагеална хранилка. Те не са открили разлики в серумната концентрация на IgG за 24 часа или скоростта на AEA, което предполага, че използването на езофагеален фидер не намалява абсорбцията на IgG. По подобен начин Desjardins-Morrissette et al. (2018) не са открили разлики в абсорбцията на IgG, когато висококачествената коластра е била хранена или чрез езофагеална хранилка, или чрез бутилка със зърна, и нито езофагеална хранилка, нито хранене с бутилка с зърна са повлияли изпразването на абомаса към тънките черва. Besser и др. (1985) заключава, че храненето с коластра с езофагеална хранилка има бърз поток от предстомаха към абомасума и тънките черва, което осигурява ефективна и достатъчна абсорбция на имуноглобулини. Друго проучване, проведено от Besser et al. (1991) оценяват 3 метода за хранене на млекодайни телета с коластра и установяват, че храненето чрез сонда е добра алтернатива за достигане на SPI. Проучването на Besser et al. (1991) наблюдават 3 стада, в които новородените са хранени с коластра от майките си, чрез хранене със зърна на шише или чрез езофагеална сонда. Неуспехът на пасивния имунитет (концентрация на IgG < 10 mg/mL) сред отделните методи е съответно 61,4, 19,3 и 10,8%. Тези резултати могат да се обяснят с възможността за изхранване на по-голям обем коластра с методи, алтернативни на майчиното кърмене, осигуряващи SPI.
Струва си да се отбележи, че в повечето ситуации, когато се хранят големи количества коластра, AEA има тенденция да намалява. Това може да се обясни с предположението, че може да съществува горна граница на количеството IgG, което може да се абсорбира за определено време (Saldana et al., 2019). Лопес и др. (2020a) съобщават за подобни резултати, при които AEA намалява, тъй като по-голяма обща IgG маса е хранена с голямо хранене с коластра от 3,78 L при раждането. Лопес и др. (2020a) също установяват, че може да съществува горна граница на абсорбция на IgG поради намалена AEA, когато по-високи дози IgG са хранени заедно с коластра, съдържаща по-големи количества общо твърди вещества.
When colostrum reaches the abomasum, it forms a curd from the reaction of renin with casein and milk fat, which separates out the whey. Curd formation occurs in milk, colostrum, and CR or milk replacers that have casein and milk fat, as they are the molecules to which chymosin specifically binds (Yvon et al., 1984; Longenbach and Heinrichs, 1998). This curd formation is somewhat detrimental to the digestion and absorption of IgG and other nutrients found in colostrum (Miyazaki et al., 2017). It is attributed to the fact that IgG is found in the whey portion of colostrum (Besser and Osborn, 1993) and permits a faster release to the intestine for absorption while leaving fat and casein in the abomasum for later absorption (Cruywagen et al., 1990). Data from Cabral et al. (2014) and Besser and Osborn (1993) suggest that casein competes with IgG for absorption in the intestinal tract, and, as a result, AEA of IgG may be negatively affected. Also, Davenport et al. (2000) demonstrated that the addition of large amounts of casein (>500 g) в коластра може да повлияе на скоростта на усвояване на IgG, което отново предполага, че усвояването на IgG може да се подобри, ако казеинът липсва или е в малки количества. По подобен начин Lopez et al. (2020a) установяват, че храненето на търговски CR с премахнат казеин повишава AEA от 24,4 на 40,1% в сравнение с висококачествена майчина коластра (106 g/L IgG). Освен това те съобщават, че добавянето на нискокачествена майчина коластра (30 g/L имуноглобулини; ниско съдържание на общи твърди вещества) с CR, който е с отстранен казеин, повишава AEA до 54,3%. Въпреки че не могат да уточнят механизма, който повишава AEA над средното ниво, Lopez et al. (2020a) предполагат, че ниската осмотичност на това хранене, намаленият казеин и по-ниското общо количество твърди вещества може да са повлияли на това как се абсорбира IgG. Кабрал и др. (2014) предполагат, че добавянето на NaHCO3 към CR може да увеличи неговите коагулационни свойства поради увеличаването на съдържанието на казеин. Предполага се, че коагулацията на казеин или образуването на извара може да бъде от полза за абсорбцията на IgG (Cabral et al., 2014; Miyazaki et al., 2017). Въпреки това, когато са налични прекомерни количества, това може да повиши осмоларитета на коластрата. Това води до по-бавна скорост на преминаване от абомасума към червата и по този начин намалена скорост на изпразване на абомасума (Constable et al., 2009; Cabral et al., 2014; Burgstaller et al., 2017). Constable и др. (2009) демонстрира, че добавянето на разтвор за перорална рехидратация, съдържащ бикарбонат, ацетат и цитрат, допринася за увеличаване на осмоларитета на кравето мляко и по този начин намалява скоростта на изпразване на абомаса. Това може да забави усвояването на имуноглобулините, ако те са хванати в изварата. Осмотичността на заместителя на коластрата може да варира поради различните им производствени техники, но са докладвани стойности около 300 mOsm (Cabral et al., 2014), и Quigley et al. (2019) съобщават за средна стойност на осмоларитета от 332 mOsm за майчината коластра. Обикновено осмоларитетът на млякото на бозайници (човек) е средно 300 mOsm/kg (Rochow et al., 2013). Осмотичността се увеличава, когато към млякото или коластрата се добавят допълнителни продукти; например добавянето на NaHCO3 към CR повишава неговия осмолалитет от 301 на 515 mm (Cabral et al., 2014), но ще варира в зависимост от съдържанието на протеин и източника (Burgstaller et al., 2017). Стойностите на осмотичност за говеждото мляко варират между 275 и 285 mOsm/L, докато някои заместители на мляко достигат до 600 mOsm/L.
Анализирайки резултатите от Saldana et al. (2019), свързано със съществуването на горна граница на абсорбция на IgG, води до предположението, че може да съществува възможно насищане на червата, което преди това е спекулирано, но не е демонстрирано напълно. Тази концепция е предложена за първи път от Besser et al. (1985), който заявява, че телетата може да имат физиологично ограничение за количеството IgG, което могат да абсорбират в определени обеми коластра. Besser и др. (1985) предполагат, че един възможен механизъм за този ефект може да бъде насищане на макромолекулния транспортен механизъм, отговорен за абсорбирането на IgG молекули в червата. Това възможно насищане е свързано със състава на коластрата на хранени с CR, включително IgG и обща концентрация на твърди вещества, но осмоларността може да играе важна роля.
ПРЕОДОЛЯВАНЕ НА НЕДОСТИГА НА КОЛАСТРА
Съхранение
Поради критичното значение на коластрата за новородените телета, всяка кравеферма трябва да разполага с достатъчно количество висококачествена коластра без болести. Когато такава коластра не може да бъде осигурена от майките, фермите трябва да имат допълнителна стратегия, за да осигурят адекватно снабдяване с коластра на новороденото теле. Съхраняването на излишната коластра предлага икономична алтернатива. Коластрата може да се съхранява чрез охлаждане или замразяване, въпреки че обикновено се съхранява замразена, за да се запази качеството и да се предотврати развитието на бактерии. Различните методи за съхранение влияят върху качеството на коластрата поради различни ефекти върху бактериалния растеж (Morrill et al., 2012). Известно е, че фермите понякога нямат правилни протоколи за съхранение на коластра. Ако прясната коластра не се дава в рамките на 2 часа след събирането, охлаждането при 4 градуса в контейнери с малък размер може да запази нейните клетъчни компоненти и имуноглобулинов състав за кратко време (Manohar et al., 1997). Доказано е, че коластрата, оставена при стайна температура, има бързо увеличаване на бактериалната пролиферация (Stewart et al., 2005), а Morrill et al. (2012) съобщават, че охладените проби от коластра са имали общ брой на блюдото до 1 милион cfu/mL. Стюарт и др. (2005) демонстрира, че броят на бактериите в коластрата най-често е нисък при прибиране на реколтата от кравата, но прехвърлянето в кофи или контейнери за съхранение е стъпката, при която коластрата често е замърсена с бактерии. Повечето препоръки гласят, че коластрата не трябва да се съхранява повече от 48 часа в хладилник, тъй като някои бактерии могат да се размножават с междинни темпове на растеж дори при студени условия (Stewart et al., 2005). Тази техника се препоръчва само като алтернатива за краткосрочно съхранение, тъй като замразяването на коластрата е най-добрият начин за запазването й и може да предотврати разграждането на съдържанието на хранителни вещества и IgG за повече от една година (Foley and Otterby, 1978; Davis and Drackley, 1998). В допълнение към бактериалната пролиферация, техниките за съхранение на коластра също са оценени за всякакви ефекти върху концентрациите на IgG в телешки серум. Храненето с пастьоризирана коластра, която е била предварително замразена, или храненето с прясно събрана коластра е довело до телета с най-висока серумна концентрация на IgG в сравнение с телета, хранени с коластра, съхранявана при 4, 13 или 22 градуса за 48 часа (Cummins et al., 2017). В резултат на това прясната или предварително замразена коластра се считат за приемливи техники за съхранение и хранене (Holloway et al., 2001).
Заместител на коластра
Ранният CR не е имал повече от или равно на 100 g IgG на доза според Quigley et al. (2001). В резултат на това бяха добавени други съставки (т.е. декстроза, глицин, сол, емулгатор, лецитин, предварителна смес от витамини и минерали, калиев хлорид, магнезиев сулфат и аромат) в опит да се подобри хранителната му стойност. Текущите CR продукти осигуряват екзогенен източник на IgG (Cabral et al., 2013), направени са от млечни, кръвни или серумни или яйчни източници (Quigley, 2004; Swan et al., 2007), но техният хранителен състав варира поради различните производствени процедури (Quigley et al., 2002; Foster et al., 2006; Swan et al., 2007). Някои производители използват CR, когато не са в състояние да осигурят адекватна майчина коластра на своите телета по време на периоди, когато кравите имат заболявания като мастит или млечни патогени като Mycobacterium avium ssp. паратуберкулоза, известна като болест на Джон (Pithua et al., 2009). Майчината коластра също може да бъде източник на Escherichia coli и левкоза по говедата за новородено теле, което може да повлияе на здравето на телетата (Cabral et al., 2013). Използването на CR продукти предотвратява FPI, като същевременно намалява експозицията на патогени, тъй като CR има по-ниска бактериална популация от майчината коластра (McGuirk и Collins, 2004; Foster et al., 2006). Като цяло, когато коластрата не е налична във фермата, CR може да бъде алтернатива поради лесното съхранение и подготовка за хранене (Priestley et al., 2013), но не трябва да замества референтното стандартно хранене с висококачествена коластра (Cabral et al. ., 2013). Едно от възможните предимства на храненето с CR е лесното приготвяне, което може да доведе до по-бързо хранене с коластра, вместо размразяване на майчината коластра от банка за коластра в някои ферми. Въпреки това беше обсъдено как продуктите на CR може да нямат антиген-специфични антитела, които могат да защитят новородените срещу специфични за фермата патогени (Swan et al., 2007), но не са документирани докладвани отрицателни ефекти.
Множество проучвания (напр. Jones et al., 2004; Lago et al., 2018; Lopez et al., 2020a) показват, че CR може да бъде алтернатива на храненето с коластра на майката новородени телета. Джоунс и др. (2004) съобщават, че концентрацията на IgG в кръвната плазма на 24-ия час не се различава между телета, хранени с майчина коластра (средно ± SD; 13,78 ± 0,39 g/L) и телета, хранени със същата маса IgG от CR (13,96 ± 0,38 g /L). Също така, мерките за развитие на растежа (т.е. ADG, височина на холката, височина на бедрата, дължина на тялото и обиколка на сърцето) не се различават между леченията. Независимо от това, трябва да се има предвид, че имуноглобулините, присъстващи в CR, може да нямат защита срещу специфични за фермата патогени (Jones et al., 2004). Въпреки че майчината коластра е предпочитаният фураж, CR може да бъде приемлива алтернатива за новородени телета.
АНАЛИЗ НА КОНЦЕНТРАЦИЯТА на IgG
Референтни методи
Серумната концентрация на IgG може да се определи чрез директни и индиректни методи, но радиалната имунодифузия (RID; директен метод) и ELISA (индиректен метод) се считат за референтни стандарти за този анализ (Coons et al., 2012; Deelen et al. , 2014; Wilm и др., 2018). И двата метода се считат за адекватен метод за идентифициране на телета с FPI (Dawes et al., 2002; Coons et al., 2012; Priestley et al., 2013). Въпреки това, Gelsinger et al. (2015) оценяват корелацията между коластра и серумен IgG, когато се анализират с ELISA или RID и откриват слаба корелация между RID и ELISA за плазма и незагрята коластра. В допълнение, Gelsinger et al. (2015) показват, че ELISA анализите, в сравнение с RID, дават резултати за по-ниска концентрация на IgG, но не може да се направи директно сравнение между двата метода. За разлика от тях, Dunn et al. (2018) съобщава за положителна корелация между тези методи за колострални (R2=0.83) и серумни концентрации на IgG (R2=0.97). Dunn et al. (2018) също препоръчва да не се сравняват директно резултатите от RID и ELISA, въпреки че и двата метода предоставят последователни, възпроизводими резултати. Като цяло, единственото ясно предимство на RID срещу ELISA е, че изисква по-малко екстензивни разреждания, което може да допринесе за вариацията в резултатите (Gelsinger et al., 2015b). Тази процедура, разработена от Fahey и McKelvey (1965) и Mancini et al. (1965) е специфичен за различни протеини, присъстващи в серума, които реагират с техните специфични антитела. Начинът на действие на този анализ се основава на реакцията между съдържанието на антитяло в ямката и антигена в серумна проба. Протеините, налични в пробата, дифундират в ямката до достигане на равновесие (Guidry and Pearson, 1979). След това се образува утаителен пръстен в рамките на 24 часа при стайна температура. Диаметърът на пръстена е пропорционален на концентрацията на протеина в пробата (Guidry and Pearson, 1979), а изчислението на IgG може да се направи чрез линейна регресия със стандартите, предоставени в комплекта (Guidry and Pearson, 1979; Gelsinger et al. , 2015b). В обобщение, този анализ работи чрез дифузия на антигена със специфичен антисерум, който утаява пръстен около ямката, докато се достигне равновесие на 24 часа.
Косвени методи
Индиректен метод, който се използва широко, е измерването на серумния общ протеин (STP) чрез рефрактометрия, което дава оценка на IgG от общия протеин в серума (Deelen et al., 2014; Thornhill et al., 2015; Elsohaby et al. ., 2019). Общият серумен протеин се счита за добър индикатор за концентрацията на IgG за прогнозиране на заболеваемостта при телетата (Naylor и Kronfeld, 1977; Naylor et al., 1977; Tyler et al., 1996; Weaver et al., 2000). Този метод е широко използван като индиректно измерване за прогнозиране на FPI и концентрацията на IgG, тъй като измерва общия протеин. Имуноглобулините допринасят за голяма част от общия протеин, присъстващ в кръвния поток на новороденото теле, което осигурява адекватни оценки, тъй като неимуноглобулиновите протеини в серума остават постоянни (Calloway et al., 2002). Корелацията между STP и IgG може да варира при телета, хранени с CR. Тази вариация се приписва на различните съотношения между IgG и общия протеин, налични в майчината коластра и CR, което влияе върху оценките на общия протеин, измерван с рефрактометър (Quigley et al., 2002). Като цяло, средното съотношение на IgG към протеин в коластрата на майката варира от 400 до 500 mg/g (Quigley et al., 2002).
Въпреки че Wilm et al. (2018) заявява, че STP е силно свързан с RID, Quigley et al. (2002) и Lago et al. (2018) споменаха, че измерванията на STP за телета, хранени с CR продукти, може да имат погрешни оценки за идентифициране на FPI. Лопес и др. (2020a) установяват, че средните нива на STP при телета, хранени с CR с ниско съдържание на казеин, са под прага на FPI от 5,2 g/dL, дори ако техният среден серумен IgG е над 10 mg/mL. По подобен начин, Quigley et al. (2002) и Lago et al. (2018) са открили нисък STP, когато телета са хранени с CR. Това предполага, че телетата все още постигат адекватни серумни концентрации на IgG, дори ако техният STP е нисък, когато се хранят с ниско съдържание на казеин CR. Лопес и др. (2020a) предложи да се използват нови гранични точки на STP за по-точно идентифициране на FPI при телета, хранени с CR, особено когато се хранят с CR на основата на суроватка. Лопес и др. (2020a) и Quigley et al. (2002) съобщава, че STP гранична точка от 4,2 g/dL е по-добър предиктор за серумна концентрация на IgG от 10 mg/mL, когато телета се хранят с CR. Като цяло са необходими повече изследвания, за да се класифицира правилно FPI или SPI при телета, хранени с CR продукти.
СЛУЧАЙ НА ПАСИВЕН ИМУНИТЕТ
Неуспехът на пасивен имунитет е състояние, считано за телета, които имат серумна концентрация на IgG<10 mg/mL at 24 h (Besser et al., 1991; Furman-Fratczak et al., 2011; Shivley et al., 2018). In contrast, calves with a serum IgG concentration >Счита се, че 10 mg/mL за 24 часа имат SPI (Quigley, 2004; Lombard et al., 2020). Освен това, за измерване на серумните концентрации на IgG на 24-ия час, STP също е анализ, използван за определяне на FPI при телета. Докладвани са различни крайни точки на концентрация на STP, включително 5,0, 5,2 или 5,5 g/dL за определяне на FPI (Tyler et al., 1996; Donovan et al., 1998; Priestley et al., 2013). Въпреки това, мета-анализ, проведен от Buczinski et al. (2018) заключава, че граничните точки на STP от 5,2 или 5,5 g/dL са най-подходящите за измерване на FPI. Burzynski и др. (2018) препоръчва прагът от 5,5 g/dL да минимизира дела на фалшивите отрицателни резултати. Проучване, проведено от Quigley et al. (2002) заявява, че разликите в съдържанието на неимуноглобулинови протеини между CR продуктите и майчината коластра засягат последователните прогнози за серумните нива на IgG чрез рефрактометрия, когато телета се хранят с CR. В резултат се стигна до заключението, че стойност от 4,9 g/dL е по-подходяща като крайна точка за определяне на FTP при телета, хранени с CR вместо майчина коластра. Куигли и др. (2002) предполагат неточността на рефрактометрията за оценка на серумните концентрации на IgG. Може да се препоръча текущите гранични точки на STP рефрактометрия да бъдат допълнително проучени, за да се оценят нивата на FPI във фермите. Съществуването на външни фактори като стратегии за хранене и управление на околната среда (т.е. канализация, настаняване и излагане на патогени) може да бъде пагубно за здравето и развитието на телетата, дори ако телетата претърпят успешен пасивен трансфер (Davis and Drackley, 1998; Swan et al. , 2007).
ЯВНА ЕФЕКТИВНОСТ НА АБСОРБЦИЯТА
Привидната ефективност на абсорбцията е термин, използван за обяснение на ефективността, с която се абсорбира колострален IgG. Това не е мярка за общия абсорбиран IgG; вместо това, това е измерване на ефективността на частта от общия IgG масово хранен, присъстващ в кръвната система на телето за 24 часа. Различни фактори влияят върху AEA, включително качеството на коластрата (концентрация на IgG), времето на първо хранене, метода на хранене, пола на телето, телесната телесна маса при раждането и статуса на хидратация, което влияе на плазмения обем в телето (Quigley et al., 1998; Godden et al. ., 2009b). Обикновено използваната AEA формула е следната: AEA={[тегло при раждане (kg) × 0,09 × серумен IgG (mg/mL 24 часа)]/общ IgG нахранен (g)} × 100 [адаптирано от Quigley и Drewry (1998), Quigley et al. (2002) и Saldana et al. (2019)].
Стойността 0.09 в представената формула отчита очаквания плазмен обем на новородено теле (9% от телесното тегло при раждане). Тази формула обаче зависи от предполагаемия процент плазма. Повечето проучвания разчитат на 9%, което е използвано от Quigley et al. (1998), но други проучвания са използвали 9,9% (Fischer et al., 2018) и 7% (Halleran et al., 2017).
Besser и др. (1991) и Davis and Drackley (1998) споменават, че минимално количество от 100 g IgG трябва да се осигури на новородените телета за постигане на SPI, но телета, хранени със 100 или дори 110 g IgG, все още могат да получат FPI. В резултат на това минималната стойност от 100 g IgG трябва да бъде допълнително изследвана. Например, сценарий, описан от Quigley et al. (2002) демонстрира, че ако телето бъде хранено със 100 g IgG (ако приемем, че има 35% AEA, което е най-високата стойност в нормалния диапазон от 20 до 35%; Quigley and Drewry, 1998), то ще има прогнозиран серумна концентрация на IgG от 9,7 mg/mL, което е под границата от 10 mg/mL, използвана за определяне на FPI. В резултат на това Quigley et al. (2002) препоръчват минимум 150 до 200 g IgG да се предоставят на новородено за предотвратяване на FPI.
Като цяло е необходимо отлично управление на коластрата за адекватно отглеждане на новородени телета. Трябва да се вземат предвид различни фактори, включително, но не само, състав и качество на коластрата, съхранение, ефективност на усвояване и метод на хранене. За да се провери дали на теле е дадено достатъчно количество IgG, е необходимо директно да се измери серумната концентрация на IgG в телето на 24-ия час от живота. Съществуват обаче индиректни методи за измерване на IgG, като STP, които могат да бъдат подходящи, когато телетата се хранят с майчина коластра. Индиректните методи може да изискват различни гранични точки за телета, хранени с CR. И двата метода, STP или серумен IgG, имат различни гранични точки (5,2 или 5,5 g/dL и 10 mg/mL, съответно), които ще определят дали телето показва SPI или FPI след поглъщане на коластра. Препоръчва се да се дава коластра с концентрация, по-голяма или равна на 50 mg/mL IgG и да се осигури в рамките на 2 часа след раждането. Това бързо хранене ще позволи на тънките черва да абсорбират желаните протеини преди постепенното им затваряне на пропускливостта, което се смята, че става напълно 24 часа след раждането. Когато висококачествената коластра не е налична за незабавно хранене, CR може да бъде алтернативно хранене. Въпреки това, тези алтернативни продукти могат да се считат за заместители само ако съдържат минимум 100 g IgG на доза и не трябва напълно да заместват стандартното хранене с майчина коластра.
РЕЗЮМЕ
Майчината коластра е високопитателна храна, която трябва да се осигури на новороденото при раждането. Има високо ниво на имуноглобулини, които са протеини, които развиват имунната система на телето чрез пасивен трансфер. Има различни видове имуноглобулини в коластрата, но класът IgG е основният, свързан с трансфера на имунитета. За да се провери дали на теле е дадено достатъчно количество IgG, е необходимо директно да се измери серумната концентрация на IgG на 24-ия час от живота. Има косвени методи за измерване на IgG, като STP или Brix %, които могат да бъдат подходящи, когато телетата се хранят с майчина коластра. Когато телета се хранят с CR, може да са необходими различни гранични точки и измерването на серумния IgG би било по-точно. Фактори като качеството на коластрата, което включва концентрацията на IgG и нивата на бактерии, ще помогнат за определяне на количеството IgG, открито в кръвния поток на телето за 24 часа. Препоръчва се да се дава коластра с концентрация, по-голяма или равна на 50 mg/mL IgG и да се осигури в рамките на 2 часа след раждането. Това бързо хранене ще позволи на тънките черва да абсорбират имуноглобулиновите протеини преди постепенното му затваряне на пропускливостта; пълното затваряне настъпва 24 часа след раждането. Когато висококачествената коластра не е налична за незабавно хранене, CR може да бъде алтернативно хранене.
ПРЕПРАТКИ
Abuelo, A., F. Culens, A. Hanes и JL Brester. 2021. Въздействие на 2 срещу 1 хранения с коластра върху неуспешното предаване на пасивен имунитет, заболеваемостта и смъртността преди отбиването и производителността на млекодайните телета в голямо млекодайно стадо. Животни (Базел) 11:782. https://doi .org/10.3390/ani11030782.
Andrew, SM 2001. Ефект на състава на коластрата и преходното мляко от юници Холщайн върху нивата на специфичност на тестовете за антибиотични остатъци. J. Dairy Sci. 84:100-106. https://doi.org/10.3168/jds.S0022 -0302(01)74457-8.
Барингтън, GM, TE Besser, WC Davis, CC Gay, JJ Reeves и TB McFadden. 1997. Експресия на имуноглобулин G1 рецептори от епителни клетки на млечната жлеза и левкоцити на млечната жлеза. J. Dairy Sci. 80:86–93. https://doi.org/10.3168/jds.S0022 -0302(97)75915-0.
Barrington, GM и SM Parish. 2001. Неонатална имунология при говеда. ветеринарен лекар Clin. North Am. Храна Anim. Практ. 17: 463-476. https:/ /doi.org/10.1016/S0749-0720(15)30001-3.
Baumrucker, CR и RM Bruckmaier. 2014. Колострогенеза: механизми на трансцитоза на IgG1. J. Mammary Gland Biol. Неоплазия 19: 103-117. https://doi.org/10.1007/s10911-013-9313-5.
Baumrucker, CR, AM Burkett, AL Magliaro-Macrina и CD Dechow. 2010. Колострогенеза: Масов трансфер на имуноглобулин G1 в коластра. J. Dairy Sci. 93:3031-3038. https://doi.org/10 .3168/jds.2009-2963.
Besser, TE, C. Gay и L. Pritchett. 1991. Сравнение на три метода за хранене на млечни телета с коластра. J. Am. ветеринарен лекар Med. ст.н.с. 198: 419-422. Besser, TE 1993. Концентрации на пасивно придобити IgG1 антитела в чревния лумен на новороденото теле. ветеринарен лекар Immunol. Имунопатология. 38: 103-112. https://doi.org/10.1016/0165 -2427(93)90116-Л.
Besser, TE, AE Garmedia, TC McGuire и CC Gay. 1985. Ефект на концентрациите на колострален имуноглобулин G1 и имуноглобулин М върху абсорбцията на имуноглобулин при телета. J. Dairy Sci. 68: 2033-2037. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(85)81065 -1.
Besser, TE и CC Gay. 1994. Значението на коластрата за здравето на новороденото теле. ветеринарен лекар Clin. North Am. Храна Anim. Практ. 10:107-117. https://doi.org/10.1016/S0749-0720(15)30591 -0.
Бесър, TE, TC McGuire, CC Gay и LC Pritchett. 1988. Трансферът на функционално антитяло на имуноглобулин G (IgG) в стомашно-чревния тракт е отговорен за клирънса на IgG при телета. J. Virol. 62:2234-2237. https://doi.org/10.1128/jvi.62.7.2234-2237.1988.
Besser, TE и D. Osborn. 1993. Ефект на говежди серумен албумин върху пасивния трансфер на имуноглобулин G1 към новородени телета. ветеринарен лекар Immunol. Имунопатология. 37: 321-327. https://doi.org/10.1016/0165 -2427(93)90203-G.
Blättler, U., HM Hammon, C. Morel, C. Philipona, A. Rauprich, V. Romé, I. Le Huërou-Luron, P. Guilloteau и JW Blum. 2001. Храненето с коластра, нейният състав и продължителността на хранене променливо променят пролиферацията и морфологията на червата и храносмилателните ензимни активности на новородени телета. J. Nutr. 131: 1256-1263. https://doi.org/10.1093/jn/131.4.1256.
Blum, JW и CR Baumrucker. 2008. Инсулиноподобни растежни фактори (IGFs), IGF свързващи протеини и други ендокринни фактори в млякото: Роля при новороденото. адв. Exp. Med. Biol. 606: 397-422. https:// doi.org/10.1007/978-0-387-74087-4_16.
Brandon, MR, DL Watson и AK Lascelles. 1971. Механизмът на прехвърляне на имуноглобулини в млечните секрети на крави. Aust. J. Exp. Biol. Med. Sci. 49: 613-623. https://doi.org/10.1038/icb.1971.67.
Бриньол, TJ и GH Stott. 1980. Ефект на кърменето, последвано от хранене с коластра от шише върху абсорбцията на имуноглобулини и оцеляването на телетата. J. Dairy Sci. 63: 451-456. https://doi.org/10.3168/jds .S0022-0302(80)82952-3.
Broughton, CW и JG Lecce. 1970. Електронно-микроскопски изследвания на йеюналния епител от неонатални прасета, хранени с различни диети. J. Nutr. 100:445-449. https://doi.org/10.1093/jn/100.4.445.
Buczinski, S., E. Gicquel, G. Fecteau, Y. Takwoingi, M. Chigerwe и J. Vandeweerd. 2018. Систематичен преглед и мета-анализ на диагностичната точност на серумната рефрактометрия и рефрактометрията по Брикс за диагностика на неадекватен трансфер на пасивен имунитет при телета. J. Vet. Стажант. Med. 32:474-483. https://doi.org/10.1111/ jvim.14893.
Bulgari, O., AM Caroli, S. Chessa, R. Rizzi и C. Gigliotti. 2013. Вариация на витамин D в краве мляко и взаимодействие с -лактоглобулин. Молекули 18: 10122–10131. https://doi.org/10.3390/molecules180910122.
Burgstaller, J., T. Wittek и GW Smith. 2017. Поканен преглед: Изпразване на абомаса при телета и потенциалното му влияние върху стомашно-чревни заболявания. J. Dairy Sci. 100:17–35. https://doi.org/10 .3168/jds.2016-10949.
Буш, LJ, MA Aguilera, GD Adams и EW Jones. 1971. Абсорбция на колострални имуноглобулини от новородени млечни телета. J. Dairy Sci. 54: 1547-1549. https://doi.org/10.3168/jds.S0022 -0302(71)86063-0.
Буш, LJ и TE Staley. 1980. Абсорбция на колострални имуноглобулини при новородени телета. J. Dairy Sci. 63: 672-680. https://doi .org/10.3168/jds.S0022-0302(80)82989-4.
Бътлър, Дж., Б. Ларсън и В. Смит. 1974. Имуноглобулини на млечните секрети при кърмене. Прес на държавния университет на Айова. Butler, JE 1969. Говежди имуноглобулини: Преглед. J. Dairy Sci. 52: 1895-1909. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(69)86871 -2.
Butler, JE 1983. Говежди имуноглобулини: Разширен преглед. ветеринарен лекар Immunol. Имунопатология. 4:43–152. https://doi.org/10.1016/ 0165-2427(83)90056-9.
Cabral, RG, MA Cabral, CE Chapman, EJ Kent, DM Haines и PS Erickson. 2014. Режим на хранене с заместител на коластра, добавяне на натриев бикарбонат и заместител на мляко: комбинираните ефекти върху абсорбционната ефективност на имуноглобулин G при новородени телета. J. Dairy Sci. 97: 2291-2296. https://doi.org/10.3168/ jds.2013-7007.
Кабрал, RG, CE Chapman и PS Erickson. 2013. Преглед: Добавки и заместители на коластра за млечни телета. проф. аним. Sci. 29:449-456. https://doi.org/10.15232/S1080-7446(15)30265-5.
Калоуей, CD, JW Tyler, RK Tessman, D. Hostetler и J. Holle. 2002. Сравнение на рефрактометри и тестови крайни точки при измерването на концентрацията на серумния протеин за оценка на състоянието на пасивен трансфер при телета. J. Am. ветеринарен лекар Med. ст.н.с. 221:1605-1608. https://doi.org/10.2460/javma.2002.221.1605.
Chigerwe, M., JW Tyler, JR Middleton, JN Spain, JS Dill и BJ Steevens. 2008. Сравнение на четири метода за оценка на концентрацията на IgG в коластра при млечни крави. J. Am. ветеринарен лекар Med. ст.н.с. 233:761-766. https://doi.org/10.2460/javma.233.5.761.
Comline, RS, HE Roberts и DA Titchen. 1951. Пътят на абсорбция на глобулин от коластра при новородено животно. Природа 167: 561-562. https://doi.org/10.1038/167561a0.
Constable, PD, W. Grünberg и L. Carstensen. 2009. Сравнителни ефекти на два разтвора за перорална рехидратация върху съсирването на млякото, рН на луминала на абомаса и скоростта на изпразване на абомаса при телета бозаещи. J. Dairy Sci. 92: 296-312. https://doi.org/10.3168/jds.2008-1462.
Coons, DM, KA Thompson, N. Lamberskiand и M. Chigerwe. 2012. Количествен непряк базиран на ELISA метод за измерване на серумен IgG при телета Springbok. Вътр. J. Appl. Рез. ветеринарен лекар Med. 10: 142-146. Cruywagen, CW, GJ Brisson и HH Meissner. 1990. Способност за образуване на извара от казеин и задържане на компоненти на заместител на млякото при млади телета. J. Dairy Sci. 73: 1578-1585. https://doi .org/10.3168/jds.S0022-0302(90)78828-5.
Cummins, C., DP Berry, JP Murphy, I. Lorenz и E. Kennedy. 2017. Ефектът от условията за съхранение на коластрата върху концентрацията на серумен имуноглобулин G на млечни юници и телешки серум и здравето и скоростта на растеж преди отбиването. J. Dairy Sci. 100:525-535. https://doi .org/10.3168/jds.2016-10892.
Cuttance, EL, W. Mason, R. Laven и C. Phyn. 2019. Връзки между неуспех на пасивен трансфер и последваща смъртност, телесно тегло и лактация при 12–36-месечни юници в базирани на пасища, сезонни млечни ферми за отелване в Нова Зеландия. ветеринарен лекар J. 251:105348. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2019.105348.
Асоциация за млечни телета и юници. 2010. Златни стандарти. Достъп до 23 юли 2021 г. http://haasnutrition.com/wp-content/uploads/ 2015/09/DCHA_GoldStandards_high-res_122016.pdf.
Davenport, DF, JD Quigley III, JE Martin, JA Holt и JD Arthington. 2000. Добавяне на казеин или суроватъчен протеин към коластра или добавка към коластра при абсорбция на IgG при новородени телета. J. Dairy Sci. 83: 2813-2819. https://doi.org/10.3168/jds .S0022-0302(00)75180-0.
Дейвис, CL и JK Drackley. 1998. Развитие, хранене и управление на младото теле. Vol. Еймс. Прес на държавния университет на Айова. Dawes, ME, JW Tyler, D. Hostetler, J. Lakritz и R. Tessman. 2002. Оценка на наличен в търговската мрежа имуноанализ за оценка на адекватността на пасивен трансфер при телета. J. Am. ветеринарен лекар Med. ст.н.с. 220:791-793. https://doi.org/10.2460/javma.2002.220.791.
Deelen, SM, TL Ollivett, DM Haines и KE Leslie. 2014. Оценка на рефрактометър Brix за оценка на концентрацията на серумен имуноглобулин G при новородени млечни телета. J. Dairy Sci. 97:3838-3844. https://doi.org/10.3168/jds.2014-7939.
DeNise, SK, JD Robison, GH Stott и DV Armstrong. 1989. Ефекти на пасивния имунитет върху последващото производство при млечни юници. J. Dairy Sci. 72: 552-554. https://doi.org/10.3168/ jds.S0022-0302(89)79140-2.
Desjardins-Morrissette, M., JK van Niekerk, D. Haines, T. Sugino, M. Oba и MA Steele. 2018. Ефектът на коластрата за хранене през сонда срещу хранене с бутилка върху абсорбцията на имуноглобулин G, изпразването на абомаса и концентрациите на плазмени хормони при новородени телета. J. Dairy Sci. 101: 4168-4179. https://doi.org/10.3168/jds.2017 -13904.
Devery, JE, CL Davis и BL Larson. 1979. Ендогенно производство на имуноглобулин IgG1 при новородени телета. J. Dairy Sci. 62: 1814-1818. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(79)83504 -3.
Dewell, RD, LL Hungerford, JE Keen, WW Laegreid, DD Griffin, GP Rupp и DM Grotelueschen. 2006. Асоциация на концентрацията на неонатален серумен имуноглобулин G1 със здравето и продуктивността при говежди телета. J. Am. ветеринарен лекар Med. ст.н.с. 228:914-921. https://doi.org/10.2460/javma.228.6.914.
Донован, GA, IR Dohoo, DM Montgomery и FL Bennett. 1998. Асоциации между пасивния имунитет и заболеваемостта и смъртността при млечни юници във Флорида, САЩ. предишна ветеринарен лекар Med. 34:31– 46. https://doi.org/10.1016/S0167-5877(97)00060-3.
Дън, А., К. Дъфи, А. Гордън, С. Морисън, А. Аргуело, М. Уелш и Б. Ърли. 2018. Сравнение на единична радиална имунодифузия и ELISA за количествено определяне на имуноглобулин G в коластра, мляко и телешки серуми. J. Appl. Anim. Рез. 46:758-765. https://doi.org/10.1080/09712119.2017.1394860.
Elizondo-Salazar, JA, BM Jayarao и AJ Heinrichs. 2010. Ефект от термичната обработка на коластра от говеда върху броя на бактериите, вискозитета и концентрацията на имуноглобулин G. J. Dairy Sci. 93:961-967. https://doi.org/10.3168/jds.2009-2388.
Елизондо-Салазар, JA, CM Jones и AJ Heinrichs. 2011. Храненето на коластра с езофагеална хранилка не намалява абсорбцията на имуноглобулин G при новородени млечни юници. проф. аним. Sci. 27: 561-564. https://doi.org/10.15232/S1080-7446(15)30539-8.
Elsohaby, I., JT McClure, M. Cameron, LC Heider и GP Keefe. 2017. Бърза оценка на качеството на коластрата от едър рогат добитък: Колко надеждни са трансмисионната инфрачервена спектроскопия и цифровите и оптичните рефрактометри? J. Dairy Sci. 100:1427-1435. https://doi.org/ 10.3168/jds.2016-11824.
Elsohaby, I., JT McClure, LA Waite, M. Cameron, LC Heider и GP Keefe. 2019. Използване на серумни и плазмени проби за оценка на неуспешния трансфер на пасивен имунитет при млечни телета. J. Dairy Sci. 102: 567-577. https://doi.org/10.3168/jds.2018-15070.
Fahey, JL и EM McKelvey. 1965. Количествено определяне на серумни имуноглобулини в плаки с антитяло-агар. J. Immunol. 94:84. Fischer, AJ, Y. Song, Z. He, DM Haines, LL Guan и MA Steele. 2018. Ефект от забавяне на храненето с коластра върху пасивния трансфер и чревната бактериална колонизация при новородени мъжки телета Холщайн. J. Dairy Sci. 101: 3099-3109. https://doi.org/10.3168/jds .2017-13397.
Fischer-Tlustos, AJ, K. Hertogs, JK van Niekerk, M. Nagorske, DM Haines и MA Steele. 2020. Концентрации на олигозахариди в коластра, преходно мляко и зряло мляко на първородни и многократни крави Холщайн през първата седмица на лактацията. J. Dairy Sci. 103:3683-3695. https://doi.org/10.3168/jds.2019-17357.
Фоли, JA и DE Otterby. 1978. Наличност, съхранение, обработка, състав и хранителна стойност на излишната коластра: преглед. J. Dairy Sci. 61: 1033-1060. https://doi.org/10.3168/jds.S0022 -0302(78)83686-8.
Фостър, DM, GW Smith, TR Sanner и GV Busso. 2006. Серумни IgG и общи протеинови концентрации при млечни телета, хранени с два продукта заместител на коластра. J. Am. ветеринарен лекар Med. ст.н.с. 229:1282-1285. https://doi.org/10.2460/javma.229.8.1282.
Frenyo, VL, JE Butler, RA Wilson и J. Kavanagh. 1987. Транспортът и метаболизмът на говежди IgM. Mol. Immunol. 24:207–219. https://doi.org/10.1016/0161-5890(87)90138-6.
Furman-Fratczak, K., A. Rzasa и T. Stefaniak. 2011. Влиянието на концентрацията на колострален имуноглобулин в серума на юници върху тяхното здраве и растеж. J. Dairy Sci. 94: 5536-5543. https:// doi.org/10.3168/jds.2010-3253.
Гелсингер, С. Л., С. М. Грей, С. М. Джоунс и А. Дж. Хайнрихс. 2014. Топлинната обработка на коластрата повишава ефективността на абсорбция на имуноглобулин G в коластрата с високо, средно и ниско качество. J. Dairy Sci. 97:2355-2360. https://doi.org/10.3168/jds.2013-7374.
Gelsinger, SL, CM Jones и AJ Heinrichs. 2015. Ефект на топлинна обработка на коластра и бактериална популация върху абсорбцията на имуноглобулин G и здравето на новородените телета. J. Dairy Sci. 98:4640-4645. https://doi.org/10.3168/jds.2014-8790.
Gelsinger, SL, AM Smith, CM Jones и AJ Heinrichs. 2015б. Техническа бележка: Сравнение на радиална имунодифузия и ELISA за количествено определяне на говежди имуноглобулин G в коластра и плазма. J. Dairy Sci. 98:4084-4089. https://doi.org/10.3168/jds .2014-8491.
Godden, S. 2008. Управление на коластрата за млекодайни телета. ветеринарен лекар Clin. North Am. Храна Anim. Практ. 24:19–39. https://doi.org/10.1016/ j.cvfa.2007.10.005.
Godden, SM, DM Haines и D. Hagman. 2009а. Подобряване на пасивния трансфер на имуноглобулини при телета. I: Ефект на дозата от хранене с търговски заместител на коластра. J. Dairy Sci. 92:1750-1757. https://doi.org/10.3168/jds.2008-1846.