Метаболитно профилиране и активност против стареене на ориз Коджи, ферментирал с Aspergillus Oryzae и Aspergillus Cristatus: Сравнително проучване Ⅱ

3. Дискусия

Различни части на ориза, като обвивка, трици, ембрион и ендосперм, от повърхността до вътрешността, имат различен химичен състав (26). По-специално оризовите трици съдържат различнифенолни киселиниифлавоноиди, за които е известно, че излагатантиоксидантна активност.В допълнение, оризовата клетъчна стена е съставена от арабиноксиланова структура, която включва ксилоза, арабиноза, ферулинова киселина и ферулинова киселина (27). Оризовата клетъчна стена обикновено е трудна за проникване, а оризът коджи предлага предимството на лесното проникване в оризовата клетъчна стена от различни ензими като протеаза и глюкозидаза от инокулирани микроби (24. Следователно оризът koii показвапо-високи нива на инхибиторна активност на тирозиназатаиантиоксидантни дейностиотколкото неговите суровини, защото съдържа ценни обогатени съединения (28.

Щракнете тук, за да получите повече информация за антиоксидантната активност на Cistanche

Ние следвахме метаболомичния подход за ориз коджи, ферментирал с две различни нишковидни гъбички, които изясниха значителни разлики в ензимната активност, производството на метаболити и биоактивностите. Активностите на различни ензими като а-амилаза, &глюкозидаза и -глюкозидаза, произведени от инокулираните A. cristatus и A. oryzae, се увеличават с времето на ферментация (Фигура 3). Тъй като тези ензими разграждат арабиноксилановата структура, различни фенолни киселини се отделят от оризовата клетъчна стена и в двете проби, както е показано на Фигура 2. Тези фенолни киселини са потенциални антиоксиданти, които облекчават оксидативния стрес 291. По този начин антиоксидантните активности и TPC анализът се увеличават с увеличаване на времето за ферментация, тъй като съдържанието на фенолна киселина е повишено (Фигури 2 и 4) По-специално, RAC има по-високо съдържание на флавоноиди от RAO, тъй като има по-високо ниво на -глюкозидаза, която хидролизира -гликозидната връзка от стената на оризовата клетка по време на растежа на A. cristatus в ориз коджи. В допълнение към отделянето от оризовата клетъчна стена, глюкозидазата хидролизира флавоноидната глюкозидна форма до форма на агликон, която притежава по-висока антиоксидантна активност 30]. Повишената флавоноидна глюкозидна форма и агликоновата форма повишават антиоксидантните активности като ABTS, DPPH FRAP и TFC, което може да повлияе на антиоксидантната активност на RAC, както е показано на картата на корелационната мрежа (Фигура 4). Това явление също беше наблюдавано в предишно проучване, което показа биотрансформация на глюкозид изофлавони до агликони и нарастващи модели на антиоксидантна активност според времето на ментация в соеви зърна, ферментирали с. cristatus [311.

RAO има по-високо ниво на а-глюкозидазна активност, която разцепва а-гликозидните връзки и автогенерира по-високо съдържание на глюкоза. Освен факта, че глюкозата е основният източник на въглерод за гъбичките, в RAC нивото на глюкозата намалява след ферментация, тъй като се използва за синтеза на вторични метаболити като производни на ауроглауцин, които са отличителни пигментни съединения, произведени от A. cristatus, а не от A. оризне. Предишни проучвания съобщават, че производните на ауроглауцин имат активност при DPPH и се приемат като потенциални антиоксидантни съединения [32]. Освен това, срутената стена на оризовата клетка може да позволи на ензимите да проникнат в най-вътрешните части на ориза [24]. Следователно все повече и повече метаболити могат да бъдат извлечени свободно без прекъсване от външната стена на ориза.

В картата на корелационната мрежа между биоактивностите и метаболитите както на RAO, така и на RAC (Фигура 4), общите тенденции са, че флавоноидите, органичните киселини, захарните производни и мастните киселини са предложени като потенциални участници в биоактивностите. Флавоноидите и фенолните киселини са известни антиоксиданти и имат много предимства по отношение на различни функции. Поради способността си да облекчават оксидативния стрес, те се използват за подобряване на качеството на храната и за подобряване на стареенето на кожата [33]. Освен това, предишно проучване съобщава, че мастните киселини и антиоксидантите могат да създадат синергичен ефект за превенция и управление на стареенето на кожата [34].

От друга страна, производните на ауроглауцин и лизофосфолипид служат като допълнителен принос към метаболитите в RAC [35]. Производните на ауроглауцин имат антиоксидантна активност, както е посочено по-горе, и следователно предполагаме, че те имат потенциала да прекратят верижните реакции на свободните радикали за облекчаване на кожния стрес. Yahagi и др. демонстрира, че лизофосфолипидите могат да поддържат овлажняването на кожата чрез засилване на експресията на фактори, свързани с кожната бариера и функциите на хидратация в кожата [36]. Овлажняването е жизненоважен фактор за здрава кожа, тъй като сухотата предизвиква увреждане на кожата, което се характеризира с грапавост, люспеста кожа и фини бръчки [37,38]. Ние оценяваме, че ауроглауцинът и лизофосфолипидите имат по-добри ефекти против стареене на кожата в крайния етап на ферментация в RAC, отколкото в RAO. Джао и др. демонстрира, че тухленият чай Fuzhuan, който съдържа доминиращата гъба A. cristatus, може да инхибира фотостареенето чрез охлаждане на ROS и задействане на Nrf2 сигнални каскади [21]. Следователно, ние приемаме, че RAC предлага по-висок потенциал против стареене от RAO, като действа чрез индиректни пътища, като например създаване на по-добри условия на кожата за изобилна влага иоблекчаване на стреса от свободните радикали.

Като цяло вярваме, че повишените мастни киселини, фенолни киселини, флавоноиди, лизофосфолипиди и хидрохинони могат да увеличат антиоксидантните активности и да подобрят РНК експресията на еластин и колаген, както и да потиснат РНК експресията на ММР-1 в края на ферментация. Тези съединения показват различни модели на промяна в метаболитите според инокулативната гъба и повлияват различни биоактивности. Това проучване изяснява разликата в общия метаболизъм между различни видове от един и същи род Aspergillus чрез използване на метаболомичен подход. В допълнение, различни ензимни активности повлияват производството на различни метаболити и индуцират различни биоактивности в RAO и RAC

4. Материали и методи

4.1. Химикали и реактиви

4.2. Подготовка на пробата и екстракция

Плесените коджи A. oryzae KCCM 11372 (Корейски културен център за микроорганизми, KCCM; Република Корея) и A. cristatus (Aspergillus cristatus Cosmax-GF от Cosmax BTI R&I center; Seongnam, Корея) бяха използвани за ферментация на ориз и отделно инокулирани . Всеки микроорганизъм се поддържа върху агар с малцов екстракт (малцов екстракт, 20 g; глюкоза, 20 g; пептон, 1 g; агар, 20 g/L) при 28 ◦C. Биопроцесът на стъпките на ферментация за производството на коджи е адаптиран от Lee et al. [11]. Пробите от ориз коджи, ферментирали с A. oryzae и A. cristatus, се събират на всеки 2 дни (от ден 0 до ден 8) и се съхраняват при условия на дълбоко замразяване (-80 ◦C) до по-нататъшни анализи. Всички проби бяха приготвени с две биологични реплики.

Методът за екстракция на проба от коджи за ориз е адаптиран от Lee et al. с леки модификации [11]. Накратко, пулверизираните лиофилизирани проби от коджи (5 g) се екстрахират чрез добавяне на 80 процента воден етанол (40 mL) и разбъркване в орбитален шейкър (200 rpm за 24 часа) при стайна температура. След центрофугиране на пробите при 10,000 rpm в продължение на 5 минути при 4 °C, супернатантите се филтруват с 0.22 µm Millex GP филтър (Merck Millipore, Billerica, MA, USA). Филтрираните екстракти от проби се сушат с помощта на скоростен вакуумен концентратор (Hanil, Сеул, Корея) и сухото тегло се измерва, за да се оцени добивът на екстракция.

4.3. GC–TOF–MS анализ

Етапите на дериватизация на екстрахирани проби от коджи от ориз са описани от Lee et al. [11]. GC–TOF–MS анализът беше проведен на Agilent 7890A GC система (Санта Клара, Калифорния, САЩ) с Pegasus HT TOF-MS (Leco Corporation, St. Joseph, MI, USA). Газът носител (хелий) се използва с RTx-5MS (30 m дължина × 0,25 mm вътрешен диаметър, J&W Scientific, Folsom, СА, САЩ) при постоянна скорост на потока от 1,5 mL/min. Температурите на инжектора и източника на йони се поддържат съответно при 250 и 230 ◦C. Температурата на пещта се поддържа при 75 ◦C в продължение на 2 минути и след това се повишава до 300 ◦C при 15 ◦C/min, което се поддържа в продължение на 3 минути. След това 1 µL от пробата се инжектира с обхват на масово сканиране m/z 50–800. Всички анализи на проби бяха извършени с три аналитични повторения.

4.4. UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS анализ

Екстрахираните проби от коджи от ориз бяха анализирани за вторични метаболити, като се използва ултрависоко ефективна течна хроматография с линеен капан, квадруполен орбитрап, тандемна масспектрометрия (UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS), използвайки протоколите, описани от Kwon et al. [39]. Всяка проба се отделя с помощта на колона Phenomenex KINETEX® C18 (100 mm 2.1 mm, 1.7 m размер на частиците; Torrance, CA, USA). Масспектрите и диапазонът на фотодиодната матрица както в режимите на положителни, така и в отрицателни йони бяха настроени съответно за m/z 100−1000 и 200−600 nm.

4.5. Обработка на данни и статистически анализ

Суровите GC–TOF–MS и UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS данни бяха трансформирани в netCDF (*.cdf) формат, като се използва съответно Leco ChromaTOF и Thermo Xcalibur софтуер. Съответните нетни CDF (*.cdf) файлове бяха подложени на MetAlign (достъп на 13 юли 2021)) софтуерно медиирана обработка на данни, използвайки протоколите, описани от Lee et al. [11,24]. Масспектрометричните данни, които представляват подходящата пикова маса (m/z), времена на задържане (min) и информация за площта на пика като променливи, бяха оценени с помощта на софтуер SIMCA-P plus 12.0 (Umetrics, Umea, Швеция) за многовариантен статистически анализ. Преди анализ на основните компоненти (PCA), частичен дискриминантен анализ на най-малки квадрати (PLS-DA) и ортогонален частичен дискриминантен анализ на най-малки квадрати (OPLS-DA), наборите от данни бяха логаритмично трансформирани и дисперсията на единицата беше мащабирана, за да се сравни коджи за ориз ферментирали с различни гъби. PASW Statistics 18 (SPSS, Inc., Chicago, IL, USA) се използва за тестване за значими разлики (p-стойност от < 0.05) чрез еднопосочен анализ на дисперсията и за изчисляване на стойностите на корелационния коефициент за корелационна карта. Картата на корелационната мрежа между метаболити, които имат стойност на коефициента на корелация на Pearson по-висока от 0,5, и биоактивности е конструирана със софтуера Cytoscape (https://www.cytoscape.org/ (достъпен на 13 юли 2021 г.)). Идентифицирането на предполагаемите метаболити беше извършено чрез съпоставяне на молекулните тегла и молекулния състав, времето на задържане, масовия фрагмент

модели и абсорбция на ултравиолетови (UV) данни от литературата и нашата вътрешна библиотека

4.6. Определяне на ензимната активност

Анализите на ензимната активност за -амилаза, -глюкозидаза и -глюкозидаза бяха извършени съгласно предишни проучвания [25,40,41]. Количество от 10 g от всяка проба от оризов коджи се екстрахира в 90 mL вода чрез разклащане на орбитален шейкър при 120 pm и 25 ◦C в продължение на 1 час. След филтриране на пробите, супернатантите се използват за оценка на ензимните активности.

4.7. Определяне на антиоксидантни активности и общо фенолно и флавоноидно съдържание

За да се определи антиоксидантната активност на пробите от ориз коджи, ABTS, DPPH, фериредуцираща антиоксидантна мощност (FRAP), общо фенолно съдържание (TPC) и общо съдържание на флавоноиди (TFC) бяха проведени в три екземпляра

Анализите ABTS и FRAP бяха извършени с помощта на метода, описан от Lee et al. [24]. Накратко, изходният разтвор на ABTS, разреден с дестилирана вода, за да се постигне крайна абсорбция от 0.7 ± 0.02 при 750 nm (180 µL) беше добавен към всеки екстракт от проба (20 µL) в 96-ямкова плака. Реакцията се оставя да протече 6 минути на тъмно при стайна температура. Абсорбцията се измерва при 750 nm с помощта на спектрофотометър. За FRAP анализа, смес от 300 mM ацетатен буфер (рН 3,6), 20 mM железен (III) хлорид и 10 mM 2,4,6-трипиридил-S-триазин (TPTZ) разтвор в 40 mM HCl (10:1:1, v/v/v) бяха приготвени. Пробата (10 µL) се смесва с 300 µL FRAP реагент и се инкубира при стайна температура в продължение на 6 минути. Абсорбцията се измерва при 570 nm. Анализът на DPPH се провежда по метода, адаптиран от Won et al. [42], където 180 µL от изходния разтвор на DPPH (0,2 mM в етанол) се смесва с 20 µL от ориз коджи с два различни гъбични екстракта в 96-плаки с ямки и се оставя да реагира в продължение на 20 минути при стайна температура на тъмно. Абсорбцията на свободните радикали чрез DPPH се измерва при 515 nm. Резултатите от ABTS, FRAP и DPPH са представени като концентрация (mM) на Trolox еквивалентен антиоксидантен капацитет (TEAC) на милиграм коджи. Стандартните криви на концентрация варират от 0.0078 mM до 1 mM TEAC.

За TFC и TPC анализите, метод, използван от Lee et al. [25] беше последван. За TFC анализа, 20 µL от всяка проба от коджи ориз се смесват с 20 µL 1 N NaOH и 180 µL 90 процента диетилен гликол в 96-плака с ямка. След инкубиране на сместа в продължение на 60 минути при стайна температура, абсорбцията се измерва при 405 nm. TFC се представя като концентрация на еквивалент на нарингин (NE) (mM) на милиграм коджи. Кривата на стандартната концентрация беше линейна между 0.0027 и 0.3445 mM NE. За анализа на TPC анализа, 20 µL от всяка проба се инкубират със 100 µL от 0,2 N реагент Folin-Ciocalteu в 96-ямкови плаки при стайна температура за 6 минути. След това към сместа се добавят 80 µL от 7,5 процента разтвор на натриев карбонат (Na2CO3) и се оставя да реагира в продължение на 60 минути при стайна температура. Накрая, абсорбцията беше оценена при 750 nm. Резултатите са посочени като концентрации на еквивалент на галова киселина (GE) (mM) на милиграм коджи в стандартен диапазон на концентрация от 0,0230–2,9391 mM GE.

4.8. Клетъчни култури

4.9. Полимеразна верижна реакция в реално време

За изолиране и количествено определяне на общата РНК от клетъчните пелети се използва реагент Trizol и анализът се извършва с помощта на спектрофотометър. Синтезът на cDNA се провежда в общ реакционен обем от 20 uL; реакционната смес се състои от 2 µg обща РНК, олиго (dT) и премикс за обратна транскрипция при следните реакционни условия: 45 °C за 45 минути, последвано от 95 °C за 5 минути. RT-PCR се използва за количествено определяне на генната експресия и резултатите впоследствие се анализират с помощта на системния софтуер StepOne PlusTM (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA). RT-PCR амплификациите бяха проведени с помощта на SYBR Green PCR Master Mix с предварително смесени ROX (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA) и праймери (Bioneer, Daejeon, Korea) в ABI 7300 инструмент, следвайки протокола на производителя. Условията на реакцията са както следва: започване при 95 ◦C за 10 минути, последвано от циклични условия от 95 ◦C за 15 s, 60 ◦C за 30 s и 72 ◦C за 30 s за 40 цикъла. -актинът се използва като вътрешен контрол.

В заключение, коджи с ориз показа производството на различни метаболити и биоактивности според различните използвани видове Aspergillus. По-високите нива нафлавоноидии производните на ауроглауцин в RAC водят до по-високиантиоксидантна активностотколкото в RAO. В допълнение, синергичните ефекти на мастната киселина иантиоксидантни съединениянамерени и в двата коджи бяха свързани с експресията на РНК нафактор против стареене на кожата. Производни на ауроглауцин и лизофосфолипиди, открити в RAC, също са кандидати, които могат да бъдат свързани сРНК експресия на фактори против стареене на кожата. Ето защо, въпреки че оризът коджи е ферментирал с помощта на членове на един и същи род (Aspergillus), съществуват значителни разлики в ензимните активности и метаболити за различните видове и те влияятбиоактивностикатоантиоксидантидейности против стареене. Следователно, това проучване предоставя цялостна представа, както и логика за рационален избор на инокулационни микроби по отношение на

метаболомика, за подобряване на качеството на търговското производство на коджи.

Допълнителни материали:Следното е достъпно онлайн на Фигура S1: PLS-DA точков график (A, B) и OPLS-DA точков график (C) за оризкоджиферментирал сAspergillus cristatusилиA. oryzaeса получени от UHPLC–LTQ–Orbitrap MS/MS (A,C) и GC–TOF–MS (B). Таблица S1: Списък на значително различни метаболити от оризкоджис различниAspergillus spp. по време на ферментация, идентифицирана от UHPLC–LTQ–Orbitrap-MS/MS, Таблица S2: Списък на значително различни метаболити от оризкоджис различниAspergillus spp. по време на ферментация, идентифицирана чрез GC-TOF-MS, Фигура S2: Корелационна карта на биоактивности (ефект на кожните клетки и антиоксидантна активност) и оризкоджиферментирал сAspergillus cristatusилиA. oryzaeметаболити според корелационния коефициент на Pearson. Всеки квадрат показва стойностите на корелационния коефициент на Pearson (r).

Авторски принос:Концептуализация, CL и SL; методология, HL, SL, SK (Seoyeon Kyung) и JR; валидиране, HL, SL и SK (Seoyeon Kyung); формален анализ, HL и SK (Seoyeon Kyung); разследване, HL и SL; ресурси, JR, SK (Seunghyun Kang) и MP; писане - подготовка на оригинална чернова, HL; писане—преглед и редактиране, HL и SL; визуализация, HL; надзор, SL и CL; администрация на проекта, SK (Seunghyun Kang), депутат и CL; придобиване на финансиране, CL Всички автори са прочели и са съгласни с публикуванотоверсия на ръкописа.

Финансиране:Тази работа беше подкрепена от Корейския институт за планиране и оценка на технологиите в хранително-вкусовата промишленост, селското и горското стопанство (IPET) чрез Програмата за изследване и развитие на селскостопански микробиоми (Стратегическата инициатива за микробиоми в селското стопанство и храните), финансирана от Министерството на земеделието, храните и селските райони Въпроси (MAFRA) (Номер на субсидията 918011-04-3-HD020). Освен това тази работа беше подкрепена от Корейския институт за планиране и оценка на технологиите в хранително-вкусовата промишленост, селското и горското стопанство (IPET) чрез Програмата за развитие на хранителни технологии с висока добавена стойност, финансирана от Министерството на земеделието, храните и селските въпроси (MAFRA) (номер на разрешение 318027-04-3-HD030)

Декларация за наличност на данни:Данните, представени в това проучване, са достъпни при поискване отАвтора за кореспонденция

Благодарности:Това изследване беше подкрепено от изследователския фонд на университета Konkuk в2020.

Препратки

1. Санлиер, Н.; Gokcen, BB; Сезгин, AC Ползи за здравето от ферментирали храни. Крит. Rev. Food Sci. Nutr. 2019, 59, 506–527. [CrossRef]

2. Ю, К.-В.; Lee, S.-E.; Choi, H.-S.; Suh, HJ; Ra, KS; Чой, JW; Hwang, J.-H. Оптимизация за приготвяне на коджи за ориз с помощта на Aspergillus oryzae CJCM-4, изолиран от традиционно корейско меджу. Food Sci. Биотехнология. 2012, 21, 129–135. [CrossRef]

3. Янг, Й.; Xia, Y.; Лин, X.; Wang, G.; Джан, Х.; Xiong, Z.; Ю, Х.; Ю, Дж.; Ai, L. Подобряване на вкусовите профили в китайското оризово вино чрез създаване на ферментиращи дрожди с превъзходна толерантност към етанол и ферментационна активност. Food Res. Вътр. 2018, 108, 83–92. [CrossRef] [PubMed]

4. Ичикава, Е.; Хирата, С.; Хата, Й.; Yazawa, H.; Тамура, Х.; Канеоке, М.; Ивашита, К.; Hirata, D. Ефект на коджи стартер върху метаболитите в японската алкохолна напитка, направена от саке ориз Koshitanrei. Biosci. Биотехнология. Biochem. 2020, 84, 1714–1723. [CrossRef]

5. Phetpornpaisan, P.; Tippayawat, P.; Джей, М.; Sutthanut, K. Местен тайландски сорт лепкав черен ориз трици: източник на функционални съединения за имуномодулация, клетъчна жизнеспособност и синтез на колаген и инхибиране на матриксната металопротеиназа-2 и -9. J. Функц. Храни 2014, 7, 650–661. [CrossRef]

6. Ким, Ей Джей; Чой, JN; Ким, Дж.; Ким, HY; Парк, SB; Йео, SH; Чой, JH; Liu, KH; Lee, CH Метаболитно профилиране и биоактивност на ориз коджи, ферментирал от щамове Aspergillus. J. Microbiol. Биотехнология. 2012, 22, 100–106. [CrossRef] [PubMed]

7. Еймс, BN; Shigenaga, MK; Hagen, TM Оксиданти, антиоксиданти и дегенеративните заболявания на стареенето. Proc. Natl. акад. Sci. САЩ 1993, 90, 7915–7922. [CrossRef] [PubMed]

8. Вълко, М.; Лайбфриц, Д.; Moncol, J.; Cronin, MT; Мазур, М.; Telser, J. Свободни радикали и антиоксиданти при нормални физиологични функции и човешки заболявания. Вътр. J. Biochem. Cell Biol. 2007, 39, 44–84. [CrossRef]

9. Утара, Б.; Сингх, AV; Zamboni, P.; Mahajan, RT Оксидативен стрес и невродегенеративни заболявания: Преглед на антиоксидантните терапевтични възможности нагоре и надолу по веригата. Curr. Неврофармакол. 2009, 7, 65–74. [CrossRef]

10. Йен, G.-C.; Chang, Y.-C.; Су, S.-W. Антиоксидантна активност и активни съединения на ориз коджи, ферментирал с Aspergillus candidus. Food Chem. 2003, 83, 49–54. [CrossRef]

11. Лий, Делавер; Лий, С.; Сингх, Д.; Jang, ES; Шин, HW; Луна, BS; Lee, CH Разрешени във времето сравнителни метаболоми за ферментация на Коджи с кафяв, бял и гигантски ембрионален ориз. Food Chem. 2017, 231, 258–266. [CrossRef] [PubMed]

12. Джарар, М.; Behl, S.; Шахин, Н.; Фатима, А.; Nasab, R. Ефекти против стареене на ретинол и алфа хидрокси киселина върху еластинови влакна на изкуствено фотостареещи човешки дермални фибробластни клетъчни линии. Вътр. J. Med Health Biomed. Pharm. инж. 2015, 7, 328.

13. Бола, SR; Ал-Субайе, AM; Ал-Джиндан, Район; Балакришна, JP; Рави, ПК; Veeraraghavan, VP; Pillai, AA; Голапали, ССР; Джоузеф, JP; Surapaneni, KM Силата на заздравяване на рани in vitro на метанолов екстракт от листа на Aristolochia saccata вероятно се медиира от неговия стимулиращ ефект върху експресията на колаген-1. Heliyon 2019, 5, e01648. [CrossRef] [PubMed]

14. Meinke, MC; Nowbary, CK; Шанцер, С.; Vollert, H.; Lademann, J.; Darvin, ME Влияние на орално приеман богат на каротеноиди екстракт от къдраво зеле върху индекса на колаген I/еластин на кожата. Хранителни вещества 2017, 9, 775. [CrossRef] [PubMed]

15. Маджид, М.; Бхат, Б.; Ананд, С.; Сивакумар, А.; Paliwal, P.; Geetha, KG Инхибиране на UV-индуцирано ROS и увреждане на колаген от екстракт от Phyllanthus emblica в нормални човешки дермални фибробласти. J. Cosmet. Sci. 2011, 62, 49–56. [PubMed]

16. Масуда, М.; Мурата, К.; Наруто, С.; Uwaya, A.; Исами, Ф.; Matsuda, H. Инхибиторни активности на матричната металопротеиназа-1 на екстракт от семена на Morinda citrifolia и неговите съставки в UVA-облъчени човешки дермални фибробласти. Biol. Pharm. Бик. 2012, 35, 210–215. [CrossRef] [PubMed]

17. Seo, Y.-K.; Юнг, С.-Х.; Песен, K.-Y.; Парк, J.-K.; Парк, C.-S. Ефект против фотостареене на екстракт от ферментирали оризови трици върху индуцирани от UV лъчи нормални кожни фибробласти. Евро. Food Res. техн. 2010, 231, 163–169. [CrossRef]

18. Гуфо, П.; Trindade, H. Оризови антиоксиданти: фенолни киселини, флавоноиди, антоцианини, проантоцианидини, токофероли, токотриеноли, -оризанол и фитинова киселина. Food Sci. Nutr. 2014, 2, 75–104. [CrossRef]

19. Бехман, А.; Филипс, RD; Chen, J. Промени в избраното физическо свойство и ензимната активност на коджи за ориз и ечемик по време на ферментация и съхранение. J. Храна. Sci. 2012, 77, M318–M322. [CrossRef]

20. Канг, Д.; Су, М.; Дуан, Й.; Huang, Y. Eurotium cristatum, потенциална пробиотична гъба от тухлен чай Fuzhuan, облекчава затлъстяването при мишки чрез модулиране на чревната микробиота. Хранителна функция. 2019, 10, 5032–5045. [CrossRef]

21. Джао, П.; Алам, MB; Lee, SH Защита на UVB-индуцирано фотостареене чрез воден екстракт от Fuzhuan-Brick Tea чрез MAPKs/Nrf2- медиирано регулиране надолу на MMP-1. Хранителни вещества 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

22. Хър, SJ; Лий, SY; Ким, YC; Чой, И.; Kim, GB Ефект на ферментацията върху антиоксидантната активност в растителни храни. Food Chem. 2014, 160, 346–356. [CrossRef] [PubMed]

23. Джоу, С.-Д.; Xu, X.; Lin, Y.-F.; Xia, H.-Y.; Хуанг, Л.; Донг, М.-С. Онлайн скрининг и идентифициране на съединения за поглъщане на свободни радикали в Angelica dahurica, ферментирали с Eurotium cristatum с помощта на HPLC-PDA-Triple-TOF-MS/MS-ABTS система. Food Chem. 2019, 272, 670–678. [CrossRef] [PubMed]

24. Лий, С.; Лий, Делавер; Сингх, Д.; Lee, CH Metabolomics разкрива оптимална предварителна обработка на зърното (смилане) към ферментация на коджи на ориз. J. Agric. Food Chem. 2018, 66, 2694–2703. [CrossRef]

Питай за още:

Имейл:wallence.suen@wecistanche.com whatsapp: плюс 86 15292862950