Приложение на кверцетин за обикновен шаран (Cyprinus Carpio): I. Ефекти върху производителността на растежа, хуморалния имунитет, антиоксидантния статус, имуно-свързаните гени и устойчивостта срещу топлинен стрес

Това проучване е направено, за да се оцени ефектът на различните нива на кверцетин върху производителността на растежа, имунните отговори, антиоксидантния статус, серумните биохимични фактори и реакциите на стрес при висока температура при обикновен шаран (Cyprinus carpio). Общ брой от 216 обикновени шарана със средно тегло 27:21 ± 53 g бяха разделени в 12 резервоара (четири третирания × три повторения) и хранени с 0 mg/kg кверцетин (T0), 200 mg/kg кверцетин (T1), 400 mg/kg кверцетин (T2) и 600 mg/kg кверцетин (T3) за 60 дни. Имаше значителни разлики в производителността на растеж и най-високото крайно телесно тегло (FBW), наддаване на тегло (WG), специфична скорост на растеж (SGR) и прием на храна (FI) бяха наблюдавани при T2 и T3 (P <0:05) .

Съществува тясна връзка между серумните биохимични фактори и имунитета. Серумните биохимични фактори са основните метаболити в човешкото тяло и повишаването или намаляването на техните нива ще повлияе на имунитета на човешкото тяло.

Серумните биохимични фактори включват протеини, въглехидрати, мазнини и други вещества, които образуват сложна метаболитна мрежа в човешкото тяло. Когато човешкото тяло е в здравословно състояние, нивата на серумните биохимични фактори ще бъдат в балансирано състояние, което помага да се поддържа здравословното състояние на човешкото тяло.

Когато човешкото тяло страда от заболяване или стрес, нивата на серумните биохимични фактори ще се променят, което ще намали имунитета. Например, когато нивата на протеин и амилаза в серума намалеят, имунитетът на тялото ще бъде значително отслабен, което ще доведе до повишена чувствителност към болести.

Ето защо е много важно да се поддържа балансът на серумните биохимични фактори, което може да се постигне чрез промени в начина на живот. Например, упражняването на повече, яденето на по-малко храни с високо съдържание на мазнини, сол и захар и яденето на повече пресни плодове и зеленчуци може да помогне на тялото да поддържа здрави нива на серумния биохимичен фактор, като по този начин подобрява имунитета.

Накратко, серумните биохимични фактори са тясно свързани с човешкия имунитет и заедно съставляват метаболитната мрежа на тялото. Трябва да поддържаме здравословен начин на живот и да поддържаме баланс на серумните биохимични фактори, за да защитим здравето си. От тази гледна точка трябва да подобрим имунитета си. Cistanche може значително да подобри имунитета, тъй като Cistanche има и антивирусни и противоракови ефекти, което може да засили способността на имунната система да се бори и да подобри имунитета на организма.

Кликнете върху ползите за здравето от цистанче

Различните нива на кверцетин значително повишават активността на пътя на комплемента (ACH50) и активността на лизозима както преди, така и след топлинен стрес (P < 0:05). Каталаза (CAT), глутатион пероксидаза (GPx) и малондиалдехид (MDA) са значително повишени при риби, изложени на топлинен стрес, но рибите, хранени с добавена диета с кверцетин, показват най-ниските нива както преди, така и след топлинен стрес (P < {{ 7}}:05). Нивата на супероксид дисмутаза (SOD) са значително повишени в диети, хранени с риба, допълнени с кверцетин и в двете фази (P <0:05). Различните нива на кверцетин доведоха до значително намаляване на аланин аминотрансферазата (ALT) и аспартат аминотрансферазата (AST) преди и след предизвикателния тест (P <0:05).

Нивата на глюкоза и кортизол бяха значително по-високи в контролната група в сравнение с другите лечения и в двете фази (P < {{0}}:05). Експресията на глутатион пероксидаза (GPx) и лизозим е значително повишена при риби, хранени с диети с добавка на кверцетин (P <0:05). Не са наблюдавани изразени ефекти за растежен хормон (GR) и интерлевкин-8 (IL8) (P > 0:05). В заключение, хранителните добавки с кверцетин (400- 600 mg/kg кверцетин) подобряват растежа, имунитета и антиоксидантния статус и повишават толерантността към топлинен стрес.

1. Въведение

Аквакултурите се развиват постепенно успоредно с растежа на световното население. Независимо от това, интензивните производствени дейности, внезапните температурни промени, необичайният климат и други условия на околната среда като такива причиняват стрес на рибата и възпрепятстват качеството на продукцията и добива, като предизвикват имунна депресия и увеличени инфекциозни епидемии. Един от най-важните елементи на околната среда в индустрията на аквакултурите е температурата, тъй като тя може да повлияе на метаболизма, хранителното поведение, растежа, оцеляването и устойчивостта на водни животни към болести [1–3]. Температурните промени намаляват растежа, ефективността на храненето, физиологичната функция, имунния отговор и окислителния статус в органите на водните животни ([3–5].

За да се справят с подобни предизвикателства, включването на функционални фуражни добавки в диетата на рибата е екологично и ефективно. Тези добавки могат потенциално да увеличат растежа и репродуктивната способност на рибата, качеството на филето и устойчивостта към болести и условия на околната среда.

Полифенолите и богатите на полифеноли добавки се добавят към храната за водни животни, за да се повиши растежа, имунния отговор, антиоксидантния статус и устойчивостта на болести [6, 7]. Считан за основния клас флавоноиди (флавоноли), семейство от полифенолни съединения, кверцетинът е изобилен в много плодове и зеленчуци, включително чай, лук, ябълки, ягоди, зеле, ядки и карфиол.

Широко признато е, че кверцетинът инхибира производството на биофилм от много патогенни бактерии като Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Streptococcus мутанти, Escherichia coli и Pseudomonas aeruginosa със своите характеристики като потискане на кворум-чувствителните пътища, инхибиране на ефлуксните помпи, прекъсване или промяна на плазмената мембрана и блокиране на синтеза на нуклеинова киселина [8]. Освен това, кверцетинът има много полезни свойства като противораково [9], антиоксидантно и противовъзпалително [10].

Предишни констатации показват, че диетичният кверцетин има положителен ефект върху антиоксидантния статус [11, 12], производителността на растежа [13, 14], качеството на плътта [15], хематологичните и имунните параметри [16], резистентността към болести [17, 18], и защитните свойства на иридовируса групер [19–21]. Някои изследвания показват, че диетичният кверцетин подобрява растежа на пилето [22] и повишава сензорните резултати като цвят, текстура и общата приемливост на козето филе [23]. При водни животни, кверцетин над 400 mg/kg подобрява растежа на тилапията (Oreochromis spp.) [24].

Предишни проучвания съобщават, че диетичните билкови добавки намаляват маркерите на стреса при някои видове риби и/или миди като Macrobrachium rosenbergii [25], Megalobrama amblycephala [26] и Oncorhynchus mykiss [27], подложени на висока температура. Въпреки това, няма налична информация за ефекта на хранителния кверцетин върху водни животни, изложени на високотемпературен стрес. Ето защо, настоящото проучване беше проведено, за да се сравни ефектът от диетичните добавки на кверцетин върху ефективността на растежа, някои имунни параметри, антиоксидантен статус, някои серумни биохимични променливи и отговорите на високотемпературен стрес при рибите.

2. Материали и методи

2.1. Experimental Diets. Four experimental diets with different quercetin (>95 процента чистота, Sigma Chemical Co., САЩ) са формулирани нива (Таблица 1). Накратко, сухите съставки се смесват старателно. След като течните съставки се дифундират в сместа, се добавя дейонизирана вода (250 ml на kg диета). Приготвената смес се екструдира в електрическа месомелачка (MG1400R, Pars Khazar, Техеран, Иран) и фуражите се подават въз основа на размера на устата на рибата (1 mm в диаметър). Накрая бяха приготвени четири експериментални диети, включващи 0 mg/kg кверцетин (T0), 200 mg/kg кверцетин (T1), 400 mg/kg кверцетин (T2) и 600 mg/kg кверцетин (T3). Пелетите се сушат в сушилен шкаф и след това се съхраняват при 4 градуса С до употреба. Химичният състав, съдържанието на влага, суров протеин, липиди и пепел бяха потвърдени чрез следните стандартни методи [28].

2.2. Риба и експериментални условия. Общо 216 обикновени шарана със средно тегло 27:21 ± 53 g бяха получени от частна рибна ферма и преместени в изследователската зала на университета в Гонбад (Гонбад, Иран). Те бяха съхранявани в 12 резервоара с плътност от 18 риби на резервоар и аклиматизирани към експериментални условия за 10 дни. По време на периода на аклиматизация обикновеният шаран е хранен с основна диета два пъти на ден. В края на времето за адаптация тези аквариуми бяха избрани на случаен принцип за 4 третирания с 3 повторения и рибите бяха хранени със скорост от 2,5 процента от телесното тегло два пъти на ден в продължение на 60 дни. Рибните отпадъци и половината от аквариумната вода се изцеждат ежедневно и се заменят с добре аерирана вода. Параметри за качеството на водата, като температура, разтворен кислород и pH, се измерват редовно и се поддържат на стандартни нива за обикновен шаран (температура 24:1±0:5C, разтворен кислород 6:8±0:2mg/l, pH7 :36 ± 0:1 и фотопериод 12D: 12L) [29].

2.3. Биометрия и вземане на кръвни проби. След 24-часов период на гладуване всички риби във всеки резервоар бяха анестезирани с помощта на 200 mg l-1 карамфил на прах и теглото на всяка риба беше записано [30]. Растежът и степента на преживяемост бяха изчислени с помощта на обща формула [7]. Три риби на резервоар (9 риби на лечение) бяха избрани на случаен принцип за вземане на кръвната проба. Кръвните проби се събират през опашната вена на всяка риба с помощта на стерилна спринцовка и се въвеждат в епруветки. Епруветките се центрофугират (5000 rpm за 10 минути при 4 градуса С) [29] и след това супернатантата се отделя и съхранява при -20 градуса С.

2.4. Топлинно предизвикателство. След 60 дни хранене беше приложено предизвикателство с топлинен стрес съгласно Dawood et al. [30] проучване в три екземпляра. Първо, храненето беше спряно по време на теста и седем гладни риби на резервоар (21 риби на третиране) бяха държани при подобни условия с висока температура (32 градуса C) в продължение на 48 часа за топлинен стрес. Използвани са нагреватели за аквариум за повишаване на температурата до 32 градуса C, а температурата на водата е проверявана често с преносими многопараметрични измервателни уреди (YSI, Китай).

2.5. Вземане на кръвни и тъканни проби. След предизвикателния тест всички риби във всеки аквариум бяха анестезирани с помощта на 200 mg l-1 карамфил на прах и три риби на резервоар (9 риби на лечение) бяха избрани за вземане на кръвни проби. Кръвните проби се събират през опашната вена на всяка риба с помощта на стерилна спринцовка и се въвеждат в епруветки. Епруветките се центрофугират (5000 rpm за 10 минути при 4 градуса С) [29] и след това супернатантата се отделя и съхранява при -20 градуса С.

2.6. Биохимичен анализ. Преди и след предизвикателни тестове, глюкоза, аланин аминотрансфераза (ALT), аспартат аминотрансфераза (AST), каталаза (CAT), глутатион пероксидаза (GPx), малондиалдехид (MDA) и супероксид дисмутаза (SOD) бяха анализирани с помощта на търговски комплекти (Pars Azmoon , Иран). Активността на серумния лизозим се анализира по метода на Saurabh и Sahoo [31] с турбидиметрия. Първо се приготвя суспензия от Micrococcus lysodeikticus чрез разтваряне на 0.2 mg ml-1 в 0.05 М натриев фосфатен буфер (рН 6,2). След това, 50 ul серум се добавя към 2 ml суспензия на Micrococcus lysodeikticus и реакционната смес се разделя в 96-ямкова микротитърна плака (Hyperion, Германия) и първоначалната OD се измерва спектрофотометрично при 450 nm веднага. Крайната оптична плътност се измерва след инкубиране на реакционната смес при 24 градуса С в продължение на 1 час. Единица лизозимна активност се дефинира като количеството на пробата, причиняващо намаляване на абсорбцията от 0,001/min лизозим на пробата, калибрирана с помощта на стандартна крива, определена с лизозим от кокоши белтък (Sigma) в PBS. Активността на серумния алтернативен комплемент (ACH50) се измерва въз основа на Yano et al. [32], в които заешки червени кръвни клетки (RBC) са използвани като мишена. Нивата на серумния кортизол се измерват чрез конкурентния метод ELISA, като се използва търговски комплект (IBL Co., Gesellschaft für Immunchemie und Immunbiologie).

2.7. Генната експресия. Общата РНК от рибен черен дроб, събрана след предизвикателен тест, беше изолирана с помощта на GeneAll Kit (GeneAll Biotechnology, Сеул, Корея). След оценка на качеството на РНК чрез електрофореза на агарозни гелове, 2 ug от общата РНК се третира с ДНКаза I и се използва за синтез на първа верига на сДНК, като се използват олиго (dT) праймери, 10 mM dNTPs и обратна транскриптаза според производителя инструкции (Thermo Scientific, Германия). Ген-специфичните праймери бяха споменати за RT-PCR анализ в Таблица 2. Бета-актин генът беше използван като вътрешна контрола. qPCR се провежда с помощта на RealQ Plus Master Mix Green (AMPLIQONIII), следвайки инструкциите на производителя. Реакцията, състояща се от 10 ul зелена смес SYBR, 1 ul разредена cDNA, 0,5 ul от всеки праймер и Millipore вода се добавя до краен обем от 20 ul. Следната програма беше използвана за реакцията: 10 минути при 95 градуса С, денатурация при 95 градуса С за 10 секунди, отгряване при 60 градуса С за 40 секунди и удължаване при 72 градуса С за 35 секунди за 40 цикъла. Нивото на РНК се изчислява въз основа на 2-ΔΔCT метода [33]. За всеки експеримент бяха направени три биологични повторения.

2.8. Статистически анализ. Данните (средно ± SD) бяха анализирани чрез еднопосочен анализ на дисперсията (ANOVA), последван от многообхватен тест на Duncan за сравняване на средните стойности между групите. Преди анализите данните бяха оценени за нормалност и хомогенност на дисперсията с теста на Shapiro-Wilk и теста на Levene, съответно. Двупосочната ANOVA също беше използвана за тестване на ефектите от диетата, топлинния стрес и техните взаимодействия. Статистическите анализи бяха проведени с помощта на SPSS софтуер версия 23 и P <0:05 беше приетото ниво на значимост.

3. Резултати

3.1. Ефективност на растежа. Имаше значителни разлики в представянето на растежа и най-високите FBW, WG, SGR и FI бяха наблюдавани в T2 и T3 (Таблица 3, P <0:05). FCR е значително намален при кверцетин, хранен с риба (Таблица 3, P< 0:05).

3.2. Серумен имунен отговор. Активността на лизозим и ACH50 беше забележително намалена, когато обикновените шарани бяха изложени на топлинен стрес, а най-ниската активност се наблюдава при риби, хранени с контролна диета и риби, хранени с хранителни добавки, представляващи най-високи нива (Таблица 4, P < 0:05). Преди и след топлинен стрес, различните нива на кверцетин значително повишават ACH50 и лизозимната активност, а най-високите активности се наблюдават при риби, хранени с 400 (T2) и 600 (T3) mg/kg кверцетин (Таблица 4, P <0:05).

3.3. Антиоксидантни ензими. Каталазата, MDA и GPx са значително повишени при риби, изложени на топлинен стрес, като най-високите нива при риби, хранени с контролна диета и риби, хранени с добавена диета с кверцетин, показват най-ниски нива (Таблица 4, P < {{3} }:05). Нивата на SOD намаляват значително при риби, изложени на топлинен стрес (когато всички лечения са комбинирани); също така, имаше значителна разлика в нивата на SOD сред леченията преди и след топлинно предизвикателство и най-високото ниво беше регистрирано в T2 и в двете фази (Таблица 5, P <0:05).

3.4. Параметри на напрежението. Преди и след топлинен стрес нивата на глюкоза и кортизол са били значително по-високи в контролната група в сравнение с лечението с добавки с кверцетин (Таблица 6, P < 0:05). Излагането на обикновения шаран на високи температури доведе до значително повишаване на AST и ALT при всички лечения, но рибите, хранени с 600 mg/kg кверцетин, имат най-ниските нива (Таблица 6, P <0:05). Освен това, преди и след провокацията, най-високите и най-ниските активности на ALT и AST са наблюдавани съответно в контролната група и Т3 (Таблица 6, P <0:05).

3.5. Генната експресия. След излагане на топлинен стрес, експресията на GPx (Фигура 1(а)) беше значително повишена и най-високите нива на РНК бяха наблюдавани при риби, хранени с 400 mg/kg кверцетин (P <0: 05). Не са наблюдавани изразени ефекти за GR (Фигура 1 (b)) и IL8 (Фигура 1 (c)), но те са били по-високи при риби, хранени с фуражи с добавка на кверцетин (P > 0:05).

Експресията на лизозимния ген е значително по-висока при обикновения шаран, хранен с храни с добавка на кверцетин, отколкото в контролната група (Фигура 1 (d)).

4. Дискусия

В това проучване включването на кверцетин в храната значително подобрява растежа и ефективността на хранене при обикновения шаран. Съответно, най-добрите WG, SGR, FI и FCR са получени при рибите, хранени с 400 и 600 mg/kg кверцетин-допълнени диети. Предишни открития показват, че диетичният кверцетин има положителен ефект върху WG, SGR и FCR в нилска тилапия (Oreochromis niloticus) [34], бял амур (Ctenopharyngodon idella) () и обикновен шаран [13]. Насърчаващият ефект на кверцетина върху растежа на рибите може да е свързан с тяхната по-добра ефикасност при стимулиране на секрецията на храносмилателни ензими като протеаза, амилаза и липаза [13, 34], намалявайки изобилието от вредни бактерии в червата и насърчавайки популациите на полезни бактерии [35], подобрявайки функцията на чревната бариера и подобрявайки повърхността на чревните власинки и бокалните клетки [36].

Активността на ACH50 е важен параметър, който е от полза при оценката на хуморалния неспецифичен имунен отговор при риби. Намаляване на серумните нива на ACH50 се съобщава при различни стресови ситуации, на които са изложени рибите. В настоящото проучване серумната активност на ACH50 значително се повишава в групата, допълнена с дози от 400 и 600 mg/kg кверцетин преди стреса и след стреса в сравнение с контролната група. В заключение, тъй като черният дроб е основният източник на протеини на комплемента, повишаването на нивата на ACH50 може да се обясни с подобряване на здравето и функцията на черния дроб. Нашите резултати по отношение на повишаване на активността на ACH50 са в пълно съгласие с констатациите от по-ранни проучвания при обикновени диети, хранени с шаран, включени с 200 или 800 mg/kg кверцетин [16]. Освен това, резултатите са в съответствие с предишни проучвания, показващи, че екзогенните фуражни добавки са успешни за предотвратяване на намаляване на активността на комплемента след стрес [37, 38].

Лизозимът е важен антимикробен пептид на вродената имунна система, нахлуващ в патогени. Значително намаление на активността на серумния лизозим е установено в контролната група от риби, изложени на 32 градуса C в продължение на 48 часа. Подобно намаляване на активността на серумния лизозим при по-високи температури се наблюдава при нилска тилапия, Oreochromis niloticus [39]. В настоящото проучване активността на серумния лизозим е значително повишена във всички групи с добавка на кверцетин преди стреса и след стреса в сравнение с контролната група. Това предполага, че добавките с кверцетин инхибират имуносупресията след стрес при висока температура.

Успоредно с нашето проучване, нивата на лизозим също са повишени при някои видове риби, хранени с храни, съдържащи кверцетин. Например, C. carpio, хранен с диета, съдържаща 200 или 800 mg kg−1 кверцетин, показва повишаване на нивата на лизозим в серума, червата и слузта [16]. Wang и др. [18] добавят 0,01, 0,1, 1, 10, 100 и 1000 ug/l кверцетин към водата за отглеждане на риба зебра (Danio rerio) и съобщават, че активността на серумния лизозим е значително по-висока в групата с 1 ug/l кверцетин, отколкото в контролна група.

Добре известно е, че серумната глюкоза се използва като неспецифичен индекс на стрес при изследвания на риби [40, 41]. В това проучване добавките с кверцетин намаляват значително съдържанието на серумна глюкоза в групата на предварителен стрес. Има някои доклади за хипогликемичните ефекти на кверцетин [42, 43]. Това беше подкрепено в скорошно проучване, където кверцетинът намалява нивата на серумната глюкоза при обикновения шаран [16]. Въпреки това, за разлика от нашето проучване, серумните нива на глюкоза при сребърен сом, Rhamdia queen [12] и платика с тъпа муцуна, Megalobrama amblycephala [44], хранени с храна, съдържаща кверцетин, остават непроменени.

Супероксид дисмутаза (SOD), каталаза (CAT) и глутатион пероксидаза (GPx) са основните ензими, които пречистват реактивните кислородни видове (ROS) и детоксикират съответно H2O2 и хидропероксидите. В допълнение, малондиалдехидът (MDA) често се използва като биомаркер за липидна пероксидация. Нашите резултати по отношение на увеличаване на SOD и намаляване на активността на MDA са в пълно съгласие с констатациите от по-ранни проучвания при обикновен шаран, C. carpio, хранени с диети, включени с 800 mg/kg кверцетин. По подобен начин Ibrahim et al. [45] съобщават за повишените SOD и GPx и намаления MDA ефект на кверцетин в нилска тилапия, Oreochromis niloticus.

Освен това, експресията на SOD mRNA [46] и нивата на активност на SOD и CAT в мозъка, хрилете, черния дроб и/или мускулите [12] са по-високи при риби, хранени с диети с кверцетин. Параметрите SOD, CAT, MDA и GPx играят значителна роля в антиоксидантния отговор при различни стресови състояния като пестициди [47], метали [48], високи температури [49, 50], хипоксия [50] и ниски температури [51]. Въпреки това, няма налични проучвания за ефектите на кверцетин върху антиоксидантния капацитет при риби при условия на високотемпературен стрес. В настоящото проучване понижените нива на CAT, MDA и GPx и повишените нива на SOD, наблюдавани при състояния на стрес след висока температура, показват значителен антиоксидантен ефект на кверцетина. По същия начин, диетичният екстракт от антрахинон, особено при нива от 0.1- 0.2 процента, значително повишава SOD и намалява нивата на MDA в черния дроб при M. rosenbergii при високотемпературен стрес [25].

Серумните ензимни активности се приемат като важни индикатори за увреждане на тъканите; например AST и ALT са индикатори за увреждане на черния дроб, а лактат дехидрогеназата (LDH) за увреждане на черния дроб или мускулите при рибите [52]. Следователно, повишаването на тези ензими в кръвта може да се дължи на увреждане на черния дроб и мускулната тъкан. Предишни проучвания показват, че осигурените серумни активности на ALT и AST намаляват, когато рибите са хранени с кверцетин [13, 16]. Досега в литературата не е открито проучване за ефектите на кверцетин при високотемпературен стрес върху серумните ензимни нива на рибите. Въпреки това [25] съобщава, че активността на AST и ALT в сладководни скариди (M. rosenbergii), хранени с диета, съдържаща антрахинонов екстракт от R. officinale Bail при високотемпературен стрес, е значително по-ниска от тази на контролната риба. В това проучване серумните AST и ALT (с изключение на 200 mg/kg) намаляват при риби, хранени с храни с добавка на кверцетин преди високотемпературен стрес. Тази тенденция се запазва и след високотемпературен стрес.

Ниските нива на серумна глюкоза при високотемпературни стресирани риби може да са резултат от условия на недохранване, чернодробни нарушения и възпаление [25, 50, 53]. Това може да бъде свързано с увеличаването на употребата на глюкоза в периферните тъкани, вероятно свързано с повишаване на търсенето на енергия, генерирано от реакцията на стрес [54]. Подобно намаляване на нивото на серумната глюкоза при по-висока температура (21 градуса C) се наблюдава при дъгова пъстърва, Oncorhynchus mykiss [50]. За разлика от нашите констатации обаче, повишени нива на глюкоза в кръвта са докладвани при платика Wuchang, M. amblycephala, при високотемпературен стрес [26]. Тези различни резултати може да са свързани с разлики в условията на отглеждане, времето на експозиция, вида риба, размера на рибата и/или възрастта.

Кортизолът в кръвта е един от най-важните показатели за отговора на топлинния стрес при рибите [55]. В това проучване нивата на кортизол са значително по-ниски при риби, хранени с различни нива на кверцетин преди топлинния стрес. Освен това рибите, хранени с диети, допълнени с кверцетин, показват значително по-ниски нива на кортизол след топлинен стрес, което подчертава защитния потенциал на добавките с кверцетин върху метаболизма на обикновения шаран. По подобен начин нилската тилапия, хранена с диетичен натриев бутират, показва намаляване на нивата на кортизол, когато е изложена на топлинен стрес [30]. В това проучване кортизолът е значително по-нисък по време на топлинен стрес при хранени с риба кверцетин в сравнение с контролната група. Тези резултати може да са свързани с антистресовите ефекти на кверцетина, който инхибира областта на повишения кортизол.

В съответствие с тези открития може да се предположи, че кверцетинът (400-600 mg/kg) може да бъде полезно вещество при лечението и защитата на клетките срещу възможен оксидативен стрес.

Наличност на данни

Наборите от данни, генерирани по време и/или анализирани по време на настоящото проучване, са достъпни от съответните автори при разумно искане.

Конфликт на интереси

Авторите декларират, че нямат конфликт на интереси

Благодарности

Това проучване беше подкрепено от университета в Забол (Иран) с код за безвъзмездна помощ (IR-UOZ-GR-6313). Тази работа беше частично подкрепена от университета в Чианг Май.

Препратки

[1] F. Wu, C. Yang, H. Wen и др., „Подобряване на устойчивостта на тилапия към стрес при ниски температури, Oreochromis niloticus: функционален анализ на Astragalus membranaceus,“ Journal of the World Aquaculture Society, vol. 50, бр. 4, стр. 749–762, 2019 г.

[2] ME Abd El-Hack, SA Abdelnour, AE Taha и др., „Билките като терморегулаторни агенти при домашни птици: преглед“, Science of the Total Environment, vol. 703, член 134399, 2020 г.

[3] C. Liu, W. Shen, C. Hou et al., „Индуцирана от ниска температура вариация в плазмените биохимични индекси и експресията на акваглицеропорин ген в големия жълт кракар Larimichthys crocea,“ Scientific Reports, vol. 9, бр. 1, стр. 1–10, 2019 г.

[4] J. Qiang, H. Yang, H. Wang, P. Xu, Z. Qi и J. He, „Изследвания върху биохимичните показатели на кръвта и експресията на чернодробна HSP70 mRNA на различни щамове тилапия, изкуствено заразени със streptococcus iniae, " Journal of Fisheries of China, том. 36, бр. 6, стр. 958–968, 2012 г.

[5] IS Vicente, LF Fleuri, PL Carvalho и др., „Фрагментът от портокалова кора подобрява антиоксидантния капацитет и хематологичния профил на нилска тилапия, подложена на индуциран от топлина/разтворен кислород стрес,“ Aquaculture Research, vol. 50, бр. 1, стр. 80–92, 2019 г.

[6] E. Ahmadifar, M. Yousefi, M. Karimi, et al., „Ползи от диетични полифеноли и богати на полифеноли добавки за здравето на водните животни: преглед“, Reviews in Fisheries Science & Aquaculture, vol. 29, бр. 4, стр. 478–511, 2021 г.

[7] E. Ahmadifar, M. Eslami, N. Kalhor, et al., „Ефект на диета, обогатена с натриев пропионат върху ефективността на растежа, антиоксидантните свойства, вродения адаптивен имунен отговор и експресията на свързани с растежа гени при критично застрашени белуга есетра (Huso huso)," Fish & Shellfish Immunology, vol. 125, стр. 101–108, 2022 г.

[8] H. Memariani, M. Memariani и A. Ghasemian, „Преглед на свойствата на кверцетин срещу биофилм срещу бактериални патогени,“ Световен вестник по микробиология и биотехнология, том. 35, бр. 9, 2019 г.

[9] SS Baghel, N. Shrivastava, RS Baghel, P. Agrawal и S. Rajput, „Преглед на кверцетин: антиоксидантни и противоракови свойства“, World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences, vol. 1, бр. 1, стр. 146–160, 2012 г.

[10] M. Lesjak, I. Beara, N. Simin и др., „Антиоксидантна и противовъзпалителна активност на кверцетин и неговите производни“, Journal of Functional Foods, vol. 40, стр. 68–75, 2018 г.

[11] TS Pês, EM Saccol, É. P. Londero et al., "Защитен ефект на кверцетин срещу оксидативен стрес, индуциран от окситетрациклин в мускулите на сребърен сом," Aquaculture, vol. 484, стр. 120–125, 2018 г.

[12] TS Pês, EM Saccol, GM Ourique и др., „Кверцетин в диетата на сребърен сом: ефекти върху антиоксидантния статус, кръвните параметри и експресията на хипофизния хормон,“ Aquaculture, vol. 458, стр. 100–106, 2016.

[13] H. Ghafarifarsani, SH Hoseinifar, S. Javahery, M. Yazici и H. Van Doan, „Ефективност на растежа, биохимични параметри и храносмилателни ензими при обикновен шаран (Cyprinus carpio), хранен с експериментални диети, допълнени с витамин С, мащерка етерично масло и кверцетин," Italian Journal of Animal Science, vol. 21, бр. 1, стр. 291–302, 2022 г.

[14] SW Zhai и SL Liu, „Ефекти на хранителния кверцетин върху производителността на растежа, нивото на серумните липиди и телесния състав на тилапия (Oreochromis niloticus),“ Italian Journal of Animal Science, vol. 12, бр. 4, член e85, 2013 г.

[15] Z. Xu, X. Li, H. Yang, G. Liang, B. Gao и X. Leng, „Диетичният кверцетин подобрява растежа, антиоксидантите и качеството на плътта на бял амур (Ctenopharyngodon idella)“, Journal на Световното дружество по аквакултура, том. 50, бр. 6, стр. 1182–1195, 2019 г.

For more information:1950477648nn@gmail.com